pBLUE -T 載體克隆試劑盒

pBLUE -T 載體克隆試劑盒 T4原理載體及其他

目錄號：42014

試劑盒組成、儲存,、穩(wěn)定性：

－20℃儲存，6個月內不影響使用效果,。

產品介紹：

許多高溫DNA聚合酶，如Taq DNA聚合酶,、Tth DNA聚合酶等擴增的PCR產物在3’-末端后都帶有一個突出的堿基A，這樣的PCR產物可以用3’-末端后帶有一個突出堿基T的載體方便地進行克隆,。pBLUE-T 載體來源于pBlueScript II SK(+) 質粒，在EcoRI酶切位點處添加了適當序列,，經XCM I 酶切后其3’末端直接產生未配對的T堿基而成,，因此有更高的重組效率,。pBLUE-T 載體插入位點兩端du特設計的兩個ECOR I位點使插入片段可以用廉價高效的ECOR I單酶切檢測； 同時pBLUE-T 載體不含NdeI或NcoI限制性內切酶位點,，可方便用于克隆含上述酶切位點的基因。此外,，本公司載體連接體系還有背景低（藍斑小于10%），重組率高（白斑中超過90%有插入片段）,，可快速連接等特點,。本說明書末列出了pBLUE-T 載體相關的技術資料,，其全序列可參照pBlueScript II SK(+)序列，只是其多克隆酶切位點處序列稍有不同,。

測序可以采用T3,、T7啟動子引物和M13通用測序引物（見后面圖譜）

操作步驟：

1. 連接反應的準備：

PCR產物是否要進行純化取決于擴增產物的質量,。如果PCR產物非常干凈，不經純化就可直接進行連接反應,。但如果是以質粒為模板的PCR產物則必須進行純化，模板質粒有可能也形成白斑,。PCR產物可以通過瓊脂糖凝膠電泳分離,。本公司生產的DNA產物快速純化回收試劑盒對70bp以上的DNA片段能很好地進行回收,。

Taq、Tth,、AmpliTaq、KlenTaq DNA聚合酶擴增的PCR產物,，其末端都帶有一個突出的3’ -A。 具有3’ -A末端的PCR產物可以直接用pBLUE-T 載體進行克隆連接,。具有3’®5’外切酶活性的DNA聚合酶（高保真酶）擴增的PCR產物是平末端,，要對這種平末端PCR產物進行克隆，應先進行3’-端加A工作,。

2. 常規(guī)連接反應：

1) 在一個標準的10 ml連接反應體系中，加入1 ml 30ng pBLUE-T 載體,、X ml PCR產物(在通常狀況下，沒有必要對PCR產物進行精確定量,，一般PCR產物與載體的摩爾比優(yōu)化至2:1~10:1就可以得到良好結果,，推薦3:1),、1ml 10′ligation Buffer和0.5-1ml (2.5 -5 Weiss Units)的T4 DNA Ligase，其余用水補足,。反應按以下體系進行：

一般最后加入T4 DNA Ligase,。

2) 16℃連接過夜（一般可在PCR儀器完成）,。

通常推薦16℃連接過夜（10ml體系標準連接酶量為2.5 Weiss Units即可），可以得到最多的轉化子,。但是本系統(tǒng)含PEG Enhancer可以提高連接效率數(shù)倍,，在高連接酶量的情況下（10ml體系推薦連接酶量為5 Weiss Units）16℃連接30分鐘即可達一般研究的要求。

3) 冰上冷卻,，然后轉化或貯存于-20℃。

3. 快速連接反應：

1) 反應按以下體系進行：

一般最后加入T4 DNA Ligase。

2) 22℃連接5-10分鐘（一般可在PCR儀器完成）,。

2 ′Quick Ligation Buffer已經包含所有優(yōu)化的快速連接成份，通常推薦22℃連接10分鐘（10ml體系連接酶量為5 Weiss Units,，長片段連接可以延長至30分鐘）一般可以得到滿意結果。此外本系統(tǒng)也可在16℃連接30分鐘（10ml體系連接酶量為5Weiss Units）即可達一般研究的要求,。

3) 冰上冷卻,，然后轉化或貯存于-20℃。

4. 轉化：

e50-100ml感受態(tài)細胞,，置于冰上,，wan全解凍后輕撣幾次將細胞均勻懸浮,。

e加入4－5ml連接液(最多可全部加入，只要體積不超過感受態(tài)細胞體積的1/10),，輕輕混勻,。冰上放置30分鐘。42℃水浴熱激90秒,。冰上放置2~3分鐘。

e加500ml LB或者SOC培養(yǎng)基(不含抗生素),，37℃ 150 rpm振蕩培養(yǎng)60分鐘,。

e將200ml細菌涂布在預先用16ml 50mg/ml IPTG和40ml 20 mg/ml X-gal 涂布的氨芐青霉su平板上,。

涂布細菌的用量依連接的效率及感受態(tài)細胞的感受率而進行適當?shù)恼{整，如果 預計的克隆較少,，可通過離心（4,000rpm,，2 分鐘）后吸除部分培養(yǎng)液，留下適量的培養(yǎng)基懸浮菌體后取全部或者適量涂布于一個平板中（涂布剩余的菌液可以擱在4度保存,，第2天如果轉化菌落數(shù)量少,，可將剩余菌液全部涂一個新培養(yǎng)板),。

e平板在37℃下正向放置1小時以吸收過多的液體，然后倒置培養(yǎng)過夜,。
5 篩選：

1). 轉化子的藍白篩選：

當外源DNA片段插入到pBLUE-T 中后,，由于外源DNA的核酸序列存在改變了LacZ基因的編碼，從而影響了其產物b-半乳糖苷酶a-片段的活性,，因此重組克隆在X-gal/IPTG平板上呈現(xiàn)為白色，而非重組克隆呈藍色,。有的時候插入片段沒有影響lacZ 基因讀碼框,， 或插入片段太小，這種情況下菌落（重組克隆）呈現(xiàn)淡藍色或者在菌落中心呈現(xiàn)淡藍斑點,，外圈白色（魚眼狀藍斑fish eye）。選擇在IPTG/X-gal平板上生長的白色菌落或者淡藍色菌落,，用牙簽挑至含氨芐青霉su的液體培養(yǎng)基，37℃培養(yǎng)過夜,。
2). 轉化子的鑒定：

a. 用上述培養(yǎng)的白色菌落的菌液抽提質粒，用ECOR I 單酶切或用其它合適的酶切,，瓊脂糖凝膠電泳檢查片段大小,，確定是否含有目的片段。

b. 挑取白色菌落直接進行PCR檢測（可參見分子克隆第3版本或者咨詢我們）

c. 用T3和T7啟動子引物或其它合適的引物測序來確定是否含有目的克隆,。

如何計算連接反應中需要的PCR產物的量?

一般PCR產物與載體的摩爾比優(yōu)化至2:1~10:1（推薦3:1）就可以得到良好結果，可采用以下公式：

[加入載體的量（ng）×插入片段大?。╧b）÷載體大?。╧b）]×插入片段和載體的摩爾比=插入片段的量（ng） 例如：插入片段和載體連接的摩爾比例為3:1,，如連接反應中加入載體40ng,，插入片段大小為1000bp,，這時應加入插入片段的量為[40ng載體×1kb插入片段÷2.984kb載體]×3/1=40.2ng。 

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