第六章 蛋白轉(zhuǎn)膜

6.1  轉(zhuǎn)膜的定義

將電泳后分離的蛋白質(zhì)從凝膠中轉(zhuǎn)移到固相載體（例如 NC 膜）上,，通常有兩種方法：毛細(xì)管印跡法和電泳印跡法,。常用的電泳轉(zhuǎn)移方法有濕轉(zhuǎn)和半干轉(zhuǎn)。兩者的原理*相同,，只是用于固定膠/膜疊層和施加電場(chǎng)的機(jī)械裝置不同,。前者操作容易，轉(zhuǎn)移效率高,；而后者適用于大膠的蛋白轉(zhuǎn)移,，所用緩沖液少。

6.2  轉(zhuǎn)移膜的選擇

    雜交膜的選擇是決定 Western blot 成敗的重要環(huán)節(jié),。應(yīng)根據(jù)雜交方案,、被轉(zhuǎn)移蛋白的特性以及分子大小等因素，選擇合適材質(zhì),、孔徑和規(guī)格的雜交膜,。用于 Western blot 的膜主要有兩種：硝酸纖維素膜（NC） 和PVDF 膜。NC 膜是蛋白印跡實(shí)驗(yàn)的標(biāo)準(zhǔn)固相支持物,，在低離子轉(zhuǎn)移緩沖液的環(huán)境下,，大多數(shù)帶負(fù)電荷的蛋白質(zhì)會(huì)與膜發(fā)生疏水作用而高親和力的結(jié)合在一起，但在非離子型的去污劑作用下,，結(jié)合的蛋白還可以被洗脫下來,。根據(jù)被轉(zhuǎn)移的蛋白分子量大小，選擇不同孔徑的 NC 膜,。因?yàn)殡S著膜孔徑的不斷減小,，膜對(duì)低分子量蛋白的結(jié)合就越牢固,。通常用 0.45 μm 和 0.2 μm 兩種規(guī)格的 NC 膜。大于 20 kD 的蛋白可用 0.45 μm 的膜,，小于 20 kD 的蛋白就要用 0.2 μm 的膜了,，如用 0.45 μm 的膜就會(huì)發(fā)生“Blowthrough”的現(xiàn)象。PVDF 膜靈敏度,、分辨率和蛋白親和力比常規(guī)的膜要高,，非常適合于低分子量蛋白的檢測(cè)。但 PVDF 膜在使用之前必需用純甲醇浸泡飽和1-5秒鐘,。

zui 常 用 于 Western Blot 的轉(zhuǎn)移膜主要是 硝 酸 纖 維 素 （ Nitrocellulose, NC ）膜和聚偏二氟乙烯（Polyvinylidene Fluoride, PVDF）膜,，此外也有用尼龍膜、DEAE 纖維素膜做蛋白印跡,。尼龍膜和 NC 膜的特點(diǎn)相似,主要用于核酸雜交,。

    硝酸纖維素（nitrocellulose, NC）膜：NC 與蛋白質(zhì)靠疏水作用結(jié)合，無需預(yù)先活化,，對(duì)蛋白質(zhì)的活性影響?。环翘禺愋员镜罪@色淺,；價(jià)格低廉,，使用方便。但結(jié)合在 NC 上的小分子蛋白質(zhì)在洗滌時(shí)易丟失,； NC韌性較差,，易損壞。

    聚偏二氟乙烯(Polyvinylidene fluoride, PVDF)膜：與蛋白質(zhì)親和力高,，用前需在甲醇中浸泡,，以活化膜上的正電基團(tuán)，使其更容易與帶負(fù)電荷蛋白結(jié)合,。

膜的選擇主要根據(jù)：

膜與目的蛋白分子的結(jié)合能力（也就是單位面積的膜能結(jié)合蛋白的載量）,，以及膜的孔徑（也就是攔截蛋白的大小）,；

不影響后續(xù)的顯色檢測(cè)（也就是適和用于所選的顯色方法,，信噪比好）；

如果后繼實(shí)驗(yàn)有其他要求,，比如要做蛋白測(cè)序或者質(zhì)譜分析,，還要根據(jù)不同目的來挑選不同的轉(zhuǎn)移膜。

6.3  轉(zhuǎn)膜步驟（以槽式濕轉(zhuǎn)為例）

1.  將膠浸于轉(zhuǎn)移緩沖液中平衡 10 min,。

注意：如檢測(cè)小分子蛋白,，可省略此步，因小分子蛋白容易擴(kuò)散出膠,。

2.  依據(jù)膠的大小剪取膜和濾紙 6 片,，放入轉(zhuǎn)移緩沖液中平衡 10 min,。如用 PVDF 膜需用純甲醇浸泡飽和 3-5秒鐘。

3.  裝配轉(zhuǎn)移三明治：海綿/3 層濾紙/膠/膜/3 層濾紙/海綿,，每層放好后，用試管趕去氣泡,。

    切記：膠放于負(fù)極面（黑色面）。

4.  將轉(zhuǎn)移槽置于冰浴中,，放入三明治（黑色面對(duì)黑色面）,，加轉(zhuǎn)移緩沖液，插上電極,，100 V,，1 h（電流約為 0.3 A）。

注意：應(yīng)再次檢查三明治和電極是否裝配正確,，電源是否接通,。

 5.  轉(zhuǎn)膜結(jié)束后，切斷電源,，取出雜交膜,。

6.4  轉(zhuǎn)膜注意事項(xiàng)

1. 泡膜：轉(zhuǎn)膜之前將海綿、膠,、膜都用預(yù)冷的轉(zhuǎn)移 buffer 浸泡 20min,；

a. 凝膠若是沒在預(yù)冷的轉(zhuǎn)膜 buffer 中浸泡，就會(huì)在轉(zhuǎn)膜過程中出現(xiàn)凝膠皺縮,，導(dǎo)致出現(xiàn)轉(zhuǎn)移條帶變形,。

b. PVDF 膜具有疏水性，需用甲醇浸泡,。

2. 轉(zhuǎn)膜順序：陰極碳板+海綿+三濾+膠+膜+三濾+海綿+陽極碳板,；

3. 轉(zhuǎn)膜條件：0.35 A/250 V/1 h/40 min/冰浴中進(jìn)行轉(zhuǎn)膜（轉(zhuǎn)膜過程產(chǎn)生大量的熱，注意冷卻）,；

（具體轉(zhuǎn)膜時(shí)間要根據(jù)目的蛋白的大小而定,；目的蛋白的分子量越大，需要的轉(zhuǎn)膜時(shí)間越長(zhǎng),，反之則短,。）

4. 其它注意事項(xiàng)：

a. 避免直接用手碰雜交膜,，使用鑷子,。因?yàn)槭稚系牡鞍缀陀椭瑫?huì)影響轉(zhuǎn)膜效率并會(huì)使膜臟掉。

b. 夾好膜和凝膠后,，確定在凝膠/膜和濾紙之間沒有氣泡存在,，否則會(huì)導(dǎo)致轉(zhuǎn)膜不*。

c. 保證膜和濾紙的大小和凝膠*一樣,，過大和過小都會(huì)影響轉(zhuǎn)膜效率。

                      d. 雞來源的抗體與 PVDF 和尼龍膜有較強(qiáng)的結(jié)合能力,，從而產(chǎn)生較高的背景，故如果選擇雞來源的抗體

6.5  轉(zhuǎn)膜后檢測(cè)（此步可以省略）

   轉(zhuǎn)膜完畢后,，立即把蛋白膜放置到預(yù)先準(zhǔn)備好的 TBST（或 PBST）中漂洗 1-2 分鐘,，以洗去膜上的轉(zhuǎn)膜液,。轉(zhuǎn)膜的效果可以觀察所使用的預(yù)染蛋白質(zhì)分子量標(biāo)準(zhǔn)，通常分子量zui大的 1-2 條帶較難全部轉(zhuǎn)到膜上,。轉(zhuǎn)膜的效果也可以用麗春紅染色液或硬度墨汁染色液對(duì)膜進(jìn)行染色,，以觀察實(shí)際的轉(zhuǎn)膜效果。也可以用考馬斯亮藍(lán)快速染色液對(duì)完成轉(zhuǎn)膜的 SDS-PAGE 膠進(jìn)行染色,，以觀察蛋白的殘留情況,。

a. 麗春紅染色：蛋白帶出現(xiàn)后，于室溫用去離子水漂洗硝酸纖維素濾膜,，換水幾次,。

b. 印度墨汁染色：只用于放射性標(biāo)記抗體或放射性標(biāo)記 A 蛋白探針的 Western 印跡過程。

印度墨汁不能和化學(xué)發(fā)光物合用,，若是使用呈色反應(yīng)的酶檢測(cè)法時(shí),，印度墨汁的黑色會(huì)使凝膠難于拍照。這時(shí),，可改用其他檢測(cè)方法或換用麗春紅 S。

注意：從轉(zhuǎn)膜完畢后所有的步驟,，一定要注意膜的保濕,，避免膜的干燥，否則極易產(chǎn)生較高的背景,。