關(guān)于酶切的有用知識-紅外線滅菌器技術(shù)文章
酶切是分子生物學中常用的，如何選擇酶切緩沖液,，提高酶切效率，是一個十分關(guān)鍵的問題,，本人摘用了其它論壇的內(nèi)容,，另外將逐步整理，使酶切問題能夠比較容易解決,，希望大家補充：
PCR產(chǎn)物的酶切,。
PCR產(chǎn)物的酶切與引物上引入的保護堿基有很大的關(guān)系，所以設(shè)計引物的時候就應(yīng)該注意到這一點,，如何選擇保護堿基,，具體參見NEB上關(guān)于保護堿基的資料:

2.加了保護堿基可能也會遇到切不動的問題，切不動可以從以下方面考慮：（1）酶切緩沖液,、

每種酶都有公司提供的*緩沖液,，它們的差別只是離子濃度與體系的不同，如Na,、k,、Mg等，還有PH值及緩沖體系（一般Tris-HCl）,，另外酶加甘油
和DTT作為保護劑。在雙酶切的時候常會遇到兩種酶有各自的緩沖液,，要達到高酶切效率,，選擇是個問題，如果酶切時間和量足夠,，解決的方法：
（A）使用其中一個酶的緩沖液,，但要考慮到另一酶的反應(yīng)效率，反應(yīng)效率如何,，可以查查酶在不同buffer里的效率參數(shù),，具體見公司，如NEB提供了很好的buffer參數(shù):

（B）
使用它們的通用的緩沖液,，使兩種酶在同一緩沖液里達到也足夠的酶切效率,；沒有通用的BUFFER怎么辦呢？
分兩次酶切,。即先用一種酶切,，膠回收后再用另一種酶切。一般先低鹽后高鹽,，這種方法保證了在各自的酶切緩沖液中都得到zui大的酶切效率,，但缺點是要回收，損
失大 ,；
（C）克隆到T載體中,，值得推薦的方法，克隆到T載體中,，不須要考慮受這個條件的限制,，酶切位點也可以用T載體上自帶的,。

（2）酶切溫度。酶切溫度也很重要,，一般的酶切zui適溫度為37度,，有些特殊的酶的反應(yīng)溫度不同，如Sma Ⅰ為30度,。雙酶切時這種情況下分開切,，先低溫后高溫。
（3）酶切時間,。酶切時間直接影響到酶切是否*,，一般為1-3h，這個時間已經(jīng)足夠,，對于一些活性較好的酶,，30min就可以酶切*，建議在酶切1h后取5ul跑電泳以鑒定酶切效率,；PCR產(chǎn)物的酶切時間較長,，一般24小時。

（4）酶失活,。如
果使用酶解凍后放置太久,，可能導(dǎo)致酶失活。這種情況較少見,，只能換新酶,。如果拿了不同公司的酶，buffer也不一樣,，怎么辦,？放心，可以用不同公司的酶
進行雙酶切,，一般不會有問題的,。可以先查查NEB的酶在不同緩沖液中的活性百分比,，選擇它們都有適中活性的buffer,，每個公司生產(chǎn)的酶反應(yīng)緩沖液針對
特定內(nèi)切酶是zui合適的！

（5）酶切體系,。選用多大的酶切體系取決于你的樣品濃度,，在雙酶切的時候為了得到質(zhì)量高的電泳圖，尤其插入的是小片段DNA,，酶切后產(chǎn)物量較少,，可以增加酶切重組DNA的量和增加上樣量，建議酶切前測定一下DNA濃度或跑電泳看看DNA有多濃,，做到心中有數(shù),。