對所有魚類樣品進行解剖和清洗,去除皮膚,、頭部、尾部,、內(nèi)臟及骨,對剩余組織進行勻漿處理,之后于-18 ℃條件下保存,。

準(zhǔn)確稱取2.0 g上述勻漿后的樣品,置于50 mL離心管中,加入20 μL內(nèi)標(biāo)混合工作溶液,混合均勻,隨后加入5 mL超純水和10 mL 2%甲酸乙腈,超聲提取15 min;向上述樣品中加入0.9 g NaCl和3.6 g無水MgSO₄,渦旋振蕩1 min,在3000 r/min下離心5 min;離心后取2 mL上清液至含有20 mg Fe₃O₄-TiO₂、20 mg PSA和120 mg無水MgSO₄的離心管中,充分混勻30 s后再置于磁分離架上進行分離;經(jīng)3 s磁分離后,取1 mL上清液過0.22 μm有機濾膜,進行UHPLC-MS/MS分析,。

為了控制樣品前處理過程可能帶來的外源性污染,實驗過程中均避免使用聚四氟乙烯材質(zhì)的器皿,。

色譜柱:Luna Omega C18柱(100 mm×2.1 mm, 1.6 μm,美國Phenomenex公司);柱溫箱溫度:35 ℃。流動相:A相為10 mmol/L乙酸銨甲醇-水(1∶9, v/v), B相為10 mmol/L乙酸銨甲醇,流速0.25 mL/min,。梯度洗脫程序:0~10 min, 10%B~100%B; 10~13 min, 100%B; 13~13.5 min, 100%B~10%B; 13.5~15 min, 10%B,。總運行時間:15 min;進樣體積:2 μL,。

離子源:電噴霧電離(ESI)源;毛細(xì)管電壓:4000 V;毛細(xì)管溫度:300 ℃;加熱塊溫度:400 ℃;脫溶劑管溫度: 250 ℃,。干燥氣(氮氣)、加熱氣(空氣),、霧化氣(氮氣)的流速分別為10,、10、3 L/min,其中氮氣由氮氣發(fā)生器提供,碰撞氣為氬氣,。數(shù)據(jù)采集模式:多反應(yīng)監(jiān)測(MRM)模式,。13種PFASs的質(zhì)譜分析參數(shù)如原文表1所示,其中每個離子對的駐留時間為2 ms。

在浙江省不同養(yǎng)殖基地采集11個魚樣品(包含4個鯉魚,、3個鱸魚,、2個白條魚、1個鯽魚和1個大黃魚),并利用本文建立方法進行檢測,以驗證該方法的實用性,。當(dāng)測定結(jié)果低于LOQ時,認(rèn)為樣品無檢出,。結(jié)果如原文表4所示,11個魚類樣品均有PFASs檢出,檢出的PFASs分別為全氟辛基磺酸(PFOS)、全氟十一烷酸(PFUnDA),、全氟辛酸(PFOA),、全氟十二烷酸(PFDoDA)和全氟十三烷酸(PFTrDA);其中,PFOS的檢出率(100%)和檢出總含量(1.728 μg/kg)最高,其次分別為PFUnDA(檢出總含量1.208 μg/kg)、PFOA(檢出總含量0.931 μg/kg),、PFDoDA(檢出總含量0.680 μg/kg)和PFTrDA(檢出總含量0.327 μg/kg),這與文獻報道結(jié)果基本一致;并且,除PFOS外,其余4種檢出的PFASs均屬于長鏈羧酸類PFASs,。由上述結(jié)果推測,魚類樣品中的主要PFASs污染因子為PFOS及長鏈羧酸類PFASs。根據(jù)文獻[30]報道,基于魚體的代謝機制,長鏈羧酸類PFASs及PFOS在魚類樣品中具有很強的生物累積和生物放大能力,。此外,對長鏈羧酸類PFASs的檢出原因進行分析,由于長鏈羧酸類PFASs具有較高的親脂性,其在生物體內(nèi)累積的可能性更高,同時PFASs在生物體內(nèi)的富集作用會隨其鏈長的增加而增大,。上述結(jié)果說明,本文所建立方法在實際魚類樣品檢測中具有較大的應(yīng)用潛力,。