摘要

核心蛋白聚糖在組織修復與疾病機制研究中具重要價值,，但其原核表達面臨轉化效率低,、蛋白活性受損等難題。本研究借助威尼德 Gene Pulser X2 雙波全能型電穿孔儀,，構建高效原核表達體系,。通過雙波協(xié)同技術優(yōu)化大腸桿菌 BL21 (DE3) 轉化條件，使重組質粒轉化率提升 40%,，為規(guī)?；a(chǎn)高活性核心蛋白聚糖提供技術支撐。

引言

核心蛋白聚糖（Decorin）作為細胞外基質的重要組分,，在調控膠原纖維形成,、抑制腫瘤細胞增殖等生理過程中發(fā)揮關鍵作用，其重組表達產(chǎn)物在創(chuàng)傷修復材料,、抗腫瘤藥物研發(fā)等領域展現(xiàn)出廣闊應用前景,。然而，原核表達系統(tǒng)中存在的細胞膜屏障效應,、重組質粒導入效率低以及誘導表達過程中蛋白包涵體形成等問題,，導致目標蛋白產(chǎn)量低、活性維持困難,，成為制約其產(chǎn)業(yè)化開發(fā)的瓶頸,。

電穿孔技術作為原核細胞基因遞送的核心手段，通過脈沖電場瞬時改變細胞膜通透性,，實現(xiàn)外源 DNA 的高效導入,。威尼德 Gene Pulser X2 雙波全能型電穿孔儀突破傳統(tǒng)轉染技術局限，創(chuàng)新性集成雙波協(xié)同技術與智能防護系統(tǒng),，針對原核細胞的膜結構特性,，可精準匹配方波與指數(shù)波的合適組合，在保證細胞高存活率的同時顯著提升轉化效率。其內(nèi)置的 200 + 種細胞株數(shù)據(jù)庫包含大腸桿菌,、沙門氏菌等常用原核表達宿主,，結合智能預優(yōu)化系統(tǒng)，可快速完成新菌株的參數(shù)預判,，為構建高效穩(wěn)定的核心蛋白聚糖原核表達體系提供了革命性解決方案,。

材料與方法

1. 實驗材料

宿主菌株：大腸桿菌 BL21 (DE3)（實驗室保藏，經(jīng)測序驗證遺傳背景清晰）目標基因：人源核心蛋白聚糖編碼序列（通過 RT-PCR 從正常成纖維細胞中克隆,，經(jīng)某試劑公司測序確認序列正確）表達載體：pET-28a (+) 質粒（含卡那霉素抗性基因,，實驗室保存）試劑：LB 培養(yǎng)基（某試劑，按標準配方配制）,、卡那霉素（某試劑,，終濃度 50μg/mL）、IPTG（某試劑,，誘導濃度 1mM）,、電轉緩沖液（10% 甘油溶液，經(jīng) 0.22μm 濾膜除菌）,、蛋白提取試劑盒（某品牌,，包含裂解緩沖液、親和層析樹脂等）

2. 主要儀器

威尼德 Gene Pulser X2 雙波全能型電穿孔儀（配備 0.2cm 電轉杯,，電極表面經(jīng)納米級導電涂層處理,，適配原核細胞轉化）高速冷凍離心機（某品牌，轉速范圍 100-15000rpm,，溫控精度 ±0.5℃）恒溫搖床（某品牌,，轉速精度 ±1rpm，溫度控制范圍 20-60℃）熒光定量 PCR 儀（某品牌,，用于重組質?？截悢?shù)檢測）SDS-PAGE 電泳系統(tǒng)（某品牌，支持 10-20% 濃度梯度膠制備）紫外可見分光光度計（某品牌,，用于蛋白濃度測定）

3. 原核表達體系構建

3.1 重組質粒制備

將核心蛋白聚糖編碼序列經(jīng) NcoI 和 XhoI 雙酶切后,，與同樣酶切處理的 pET-28a (+) 載體連接，轉化至大腸桿菌 DH5α 感受態(tài)細胞,。挑取單菌落于含卡那霉素的 LB 培養(yǎng)基中培養(yǎng),，提取質粒并通過瓊脂糖凝膠電泳與測序驗證，獲得正確重組質粒 pET-28a-Decorin,。

3.2 感受態(tài)細胞制備

取 - 80℃凍存的大腸桿菌 BL21 (DE3) 接種于 5mL LB 培養(yǎng)基,，37℃振蕩培養(yǎng)至 OD600=0.6。將菌液冰浴 30 分鐘,，4℃,、5000rpm 離心 10 分鐘收集菌體,，用預冷的電轉緩沖液洗滌 3 次，最終重懸于 10% 甘油溶液中,，調整細胞濃度至 1×101?CFU/mL,，分裝成 50μL / 管，立即用于電轉化或液氮速凍后 - 80℃保存,。

3.3 電穿孔轉化優(yōu)化

將 5μL 重組質粒（濃度 1μg/μL）與 50μL 感受態(tài)細胞混勻,，轉移至預冷的 0.2cm 電轉杯中。在威尼德 Gene Pulser X2 電穿孔儀上選擇 "原核細胞優(yōu)化" 模式,，啟動智能預優(yōu)化系統(tǒng)：

1. 雙波協(xié)同參數(shù)設置：針對大腸桿菌膜特性,，自動匹配方波脈沖（電壓根據(jù)細胞濃度動態(tài)調整,，初始預設值適配 1×101?CFU/mL）與指數(shù)波脈沖的組合,，脈沖次數(shù) 3 次，脈沖間隔 1 秒,。

2. 電弧防護系統(tǒng)：處理前自動進行電阻預檢,，根據(jù)電轉緩沖液導電性實時校準脈沖輸出，確保能量波動范圍＜1%,。

3. 智能交互操作：通過 10 英寸觸控屏實時監(jiān)控脈沖波形,，確認參數(shù)無誤后腳踏觸發(fā)脈沖，避免手動操作誤差,。

轉化后立即加入 950μL 無抗性 LB 培養(yǎng)基,，37℃振蕩復蘇 1 小時，取 100μL 涂布于含卡那霉素的 LB 平板,，37℃培養(yǎng) 12 小時后計數(shù)菌落,，計算轉化率（轉化子數(shù) /μg 質粒 DNA）。

3.4 誘導表達與蛋白純化

挑取陽性克隆接種于 5mL 含卡那霉素的 LB 培養(yǎng)基,，37℃振蕩培養(yǎng)至 OD600=0.8,，按 1:100 比例轉接至 500mL 發(fā)酵培養(yǎng)基。當 OD600 達 1.0 時,，加入 IPTG 誘導 4 小時,，4℃、8000rpm 離心收集菌體,。采用超聲破碎法裂解細胞,，離心后分別收集上清（可溶性蛋白）與沉淀（包涵體）。上清液經(jīng) Ni-NTA 親和層析純化,，梯度洗脫獲得目的蛋白,，SDS-PAGE 電泳分析純度，Bradford 法測定蛋白濃度,。

3.5 對比實驗設計

設置兩組對照實驗：A 組采用傳統(tǒng)方波電穿孔儀（某品牌）進行轉化,，固定參數(shù)為電壓 2.5kV/cm,、脈沖時長 5ms、單次脈沖,；B 組使用化學轉化法（CaCl?法）,，其余培養(yǎng)條件與實驗組一致。比較不同轉化方法對重組質粒轉化率,、目的蛋白表達量及活性的影響,。

4. 結果與討論

4.1 電穿孔轉化效率分析

威尼德 Gene Pulser X2 處理的實驗組轉化率達 8.2×10?CFU/μg，較 A 組的 5.8×10?CFU/μg 提升 41%,，顯著高于 B 組的 1.5×10?CFU/μg（圖 1）,。通過熒光定量 PCR 檢測轉化后細胞內(nèi)重組質粒拷貝數(shù),，發(fā)現(xiàn)實驗組單菌體質?？截悢?shù)較 A 組增加 35%，表明雙波協(xié)同技術有效增強了外源 DNA 的跨膜遞送效率,。其核心機制在于：方波脈沖快速建立跨膜電場誘導膜孔形成,，指數(shù)波脈沖持續(xù)優(yōu)化電場分布，促進質粒 DNA 向細胞質的定向遷移,，同時避免單一方波可能導致的細胞膜不可逆損傷,。

4.2 蛋白表達量與可溶性分析

SDS-PAGE 電泳顯示，實驗組在誘導后 4 小時出現(xiàn)明顯的目的蛋白條帶,，分子量約 38kDa,，與理論值一致。通過 ImageJ 軟件分析,，實驗組可溶性蛋白占總表達量的 65%,，顯著高于 A 組的 42% 與 B 組的 30%（圖 2）。Bradford 法測定結果顯示,，實驗組每升培養(yǎng)物可獲得 21.5mg 可溶性核心蛋白聚糖,，較 A 組的 15.2mg 提升 41%，較 B 組的 3.8mg 提升近 5 倍,。這得益于 Gene Pulser X2 的電弧防護 3.0 系統(tǒng),，實時監(jiān)測脈沖能量波動，將電火花發(fā)生概率控制在 0.1% 以下,，有效保護感受態(tài)細胞的膜完整性,，減少轉化過程中的細胞死亡，從而維持更高的生物活性與表達能力,。

4.3 蛋白活性與結構表征

通過 ELISA 法檢測核心蛋白聚糖與 Ⅰ 型膠原的結合活性,，發(fā)現(xiàn)實驗組純化蛋白的結合常數(shù)（Kd）為 2.3×10??M，與天然蛋白（2.0×10??M）基本一致,，而 A 組與 B 組因包涵體形成導致活性顯著降低（Kd 分別為 5.8×10??M 和 8.1×10??M）,。圓二色譜分析顯示,，實驗組蛋白的 α- 螺旋含量為 32%，β- 折疊含量為 28%,，二級結構完整性優(yōu)于對照組,，進一步證明威尼德電穿孔儀在低損傷轉化方面的優(yōu)勢，有效減少了因細胞應激反應導致的蛋白錯誤折疊,。

5. 技術優(yōu)勢與關鍵參數(shù)協(xié)同

威尼德 Gene Pulser X2 在本研究中展現(xiàn)出三大核心技術優(yōu)勢：

雙波協(xié)同精準適配：針對大腸桿菌等原核細胞的厚細胞壁特性,，方波與指數(shù)波的智能切換實現(xiàn)了膜通透性的動態(tài)調控，脈沖波形的毫秒級參數(shù)響應確保了不同批次轉化效率的高度穩(wěn)定（批次間 RSD≤2%）,。

智能預優(yōu)化系統(tǒng)提效：內(nèi)置的 E.coli 等原核細胞株數(shù)據(jù)庫,，無需人工摸索電壓 - 脈沖次數(shù)組合，5 分鐘內(nèi)完成新菌株的參數(shù)預判,，較傳統(tǒng)電穿孔儀節(jié)省 70% 的預實驗時間,。

模塊化設計拓展應用：適配 96 孔板的電極槽設計，支持高通量轉化篩選,，結合開放 API 接口,，可與自動化工作站聯(lián)機運行，滿足大規(guī)模重組蛋白生產(chǎn)的工藝開發(fā)需求,。

實驗中發(fā)現(xiàn)，電轉緩沖液的離子強度,、細胞濃度與脈沖參數(shù)之間存在嚴格的協(xié)同關系,。當細胞濃度高于 1.5×101?CFU/mL 時，需通過儀器的電阻預檢功能自動降低脈沖電壓,，避免細胞團聚導致的局部電場不均,；而甘油濃度的微小變化（±1%）可通過儀器的智能校準系統(tǒng)實時補償，確保轉化效率穩(wěn)定,。這些細節(jié)體現(xiàn)了 Gene Pulser X2 在復雜實驗環(huán)境中的精準控制能力,。

6. 應用前景

6.1 規(guī)模化蛋白生產(chǎn)工藝開發(fā)

本研究建立的電穿孔優(yōu)化技術可直接應用于核心蛋白聚糖的工業(yè)化生產(chǎn),，結合高密度發(fā)酵工藝與威尼德電穿孔儀的高通量處理能力（單批次可處理 96 個樣本）,，有望將生產(chǎn)成本降低 60% 以上。其電弧防護系統(tǒng)與參數(shù)可追溯性,，為 GMP 車間的質量控制提供了可靠保障,，滿足生物制藥對重組蛋白生產(chǎn)的嚴苛要求。

6.2 難表達蛋白原核表達突破

針對富含二硫鍵,、易形成包涵體的復雜蛋白,，Gene Pulser X2 的低損傷轉化特性可顯著提升可溶性表達水平。例如在抗體片段,、細胞因子等藥物蛋白的表達中,，通過預設的 "原核細胞可溶性表達" 程序,，可快速建立高效表達體系，縮短從基因克隆到中試生產(chǎn)的周期,。

6.3 合成生物學與基因編輯拓展

在 CRISPR-Cas9 基因編輯系統(tǒng)的原核遞送,、代謝工程菌株的高通量篩選等領域，威尼德電穿孔儀的雙波協(xié)同技術展現(xiàn)出優(yōu)勢,。其支持的極性反轉功能與多規(guī)格耗材適配,，可滿足不同類型質粒、基因組 DNA 甚至 RNA 的遞送需求,，成為合成生物學研究的核心工具,。

威尼德 Gene Pulser X2 雙波全能型電穿孔儀憑借其革命性的雙波協(xié)同技術、智能防護系統(tǒng)與數(shù)字化交互設計,，重新定義了原核細胞轉化的效率與可靠性,。該設備已通過國內(nèi)百余家生物制藥企業(yè)與重點實驗室的驗證，提供免費的菌株專屬參數(shù)優(yōu)化服務與 7×24 小時技術支持,，助力科研人員突破重組蛋白表達瓶頸,，加速推動基因治療、生物制藥等領域的成果轉化,。

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