4 殼聚糖蝦青素納米顆粒對肝纖維化小鼠肝損傷生長的抑制
4.1 實驗設計的科學依據
劑量選擇:參考文獻中蝦青素有效劑量(10-60 mg/kg/d)及殼聚糖納米遞送系統(tǒng)的生物利用度優(yōu)化結果。
陽性對照:選用索拉非尼(5 mg/kg/d)驗證殼聚糖蝦青素納米顆粒與傳統(tǒng)化療藥物的效果差異,。
檢測指標關聯(lián)性:
肝損傷體積/重量:直接評估抗肝損傷效果,。
凋亡相關蛋白(Bax/Bcl-2):揭示誘導凋亡的分子機制。
肝組織病理學:觀察肝損傷壞死及正常組織損傷程度,。
4.2 技術路線
肝纖維化模型建立 → 肝損傷增殖/氧化應激 → 殼聚糖蝦青素納米顆粒干預 → 抑制增殖/誘導凋亡 + 抗氧化抗炎 → 抑制肝損傷生長,、改善肝功能。
4.3 實驗材料
耗材:1 mL無菌注射器,、鈍頭灌胃針(20-22 G,,3-4 cm)、無菌EP管,、離心管,。
試劑:殼聚糖蝦青素納米顆粒(粒徑100-200 nm,Zeta電位+30 mV),、生理鹽水、索拉非尼,。
設備:電子天平(0.1 mg精度),、微量移液器(10-1000 μL),、小動物活體成像系統(tǒng)、小鼠固定器,。
動物:C57BL/6J SPF級小鼠(6-8周齡)
實驗周期:肝纖維化建模4周,,干預治療6周。
4.4 實驗步驟
4.4.1 實驗動物分組設計
分組原則:
對照全面性:涵蓋正常肝組織,、肝纖維化模型,、干預梯度及陽性對照。
邏輯遞進性:從基礎對照到劑量效應,,明確藥物作用機制,。
具體分組(每組8-10只):
4.4.2 藥物配制
1. 納米顆粒懸浮液制備步驟:
原料準備:
殼聚糖蝦青素納米顆粒凍干粉(無菌分裝,,避光保存于-20℃)。
生理鹽水(0.9% NaCl,,滅菌處理),。
母液配制:
稱取凍干粉,按 10 mg/mL 濃度加入生理鹽水(例:50 mg凍干粉 + 5 mL生理鹽水),。
渦旋振蕩:2000 rpm,,持續(xù)10分鐘,確保顆粒充分分散,,避免聚集,。
超聲處理(可選):20 kHz超聲探頭,功率50 W,,冰浴中超聲3分鐘(間歇脈沖,,開2秒/關1秒),進一步分散納米顆粒,。
2. 工作液稀釋:
根據劑量需求稀釋至目標濃度(如10 mg/kg或50 mg/kg,,此處的目標濃度是指按照正常成年人(60kg)所需劑量換算成小鼠的給藥量),現(xiàn)用現(xiàn)配,,避光保存(4℃≤24 h),。
示例: 目標劑量 10 mg/kg(小鼠體重25 g):
灌胃體積通常為 0.1 mL/10 g(即0.25 mL/25 g)。
所需濃度 = 劑量(10 mg/kg) × 體重(0.025 kg) / 灌胃體積(0.25 mL) = 1 mg/mL,。
取母液(10 mg/mL)與生理鹽水按 1:9 比例稀釋(如1 mL母液 + 9 mL鹽水),;
50 mg/kg(此處的目標濃度是指按照正常成年人(60kg)所需劑量換算成小鼠的給藥量)所需濃度同上。
3. 質量控制:
粒徑<200 nm,,Zeta電位>+30 mV,,無菌過濾(0.22 μm)。
4. 保存:
現(xiàn)配現(xiàn)用,,避光4℃保存≤24 h,。
防聚集:充分渦旋/超聲,,避免靜置。
穩(wěn)定性:pH 5.5-6.0(可加0.1%醋酸),。
毒性控制:測試空白載體,,濃度<2%。
4.4.3 灌胃操作關鍵步驟:
1.灌胃前準備:
禁食4小時(不禁水),,減少胃內容物干擾,。
使用鈍頭灌胃針(直徑1.5 mm),灌胃體積以0.1 mL/10 g體重為依據,,每天固定時間持續(xù)灌胃,,陽性藥是根據正常成年人日口服推薦量和小鼠體重進行等量換算。
2.固定與進針:
抓取小鼠頸背部,,頭部后仰30°,,沿口腔右側緩慢插入灌胃針(深度3-3.5 cm)。
遇阻力時退出調整角度,,避免刺傷食道(見以下圖示),。
3.推注與觀察:
勻速推注(0.05 mL/s),,觀察小鼠無嗆咳后退出針頭。
記錄灌胃時間,、劑量及不良反應(如腹瀉,、呼吸困難)。
4.4.4 C57肝纖維化檢測指標
1. 組織病理
染色:Masson(膠原藍染),、天狼星紅(膠原定量)
評分:Ishak或METAVIR系統(tǒng)
標志物:α-SMA(活化的星狀細胞)
2. 血清指標
損傷:ALT,、AST
纖維化:HA(透明質酸)、PCIII(III型前膠原肽)
3. 分子檢測
基因:Col1a1,、TGF-β1(qPCR)
蛋白:Collagen I,、α-SMA(Western Blot)
4. 功能指標
羥脯氨酸:定量肝膠原含量(金標準)
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