一,、實驗前準備

1. 試劑與耗材
   • 檢查試劑盒組分：裂解液(Buffer AL/BL)、洗滌液(Buffer AW1/AW2),、洗脫液(Buffer AE),、蛋白酶K、吸附柱,、收集管等,。
   • 自備物品：無水乙醇(如需添加到洗滌液中)、離心機,、移液器,、1.5mL離心管、渦旋振蕩器,、水浴鍋(或金屬浴),。
2. 樣本處理
   • 使用EDTA抗凝全血，確保樣本未溶血,。若樣本量不足,，可用生理鹽水或PBS稀釋至推薦體積(如200-500μL)。

二,、詳細操作步驟

步驟1：紅細胞裂解(可選,，視試劑盒設計而定)

• 目的：去除紅細胞，保留白細胞核,。
• 操作：
  1. 將全血樣本轉(zhuǎn)移至15mL離心管,，加入3-5倍體積的紅細胞裂解液(如Buffer EL)。
  2. 顛倒混勻后,，室溫靜置5-10分鐘,，期間輕彈管底以促進裂解。
  3. 2000×g離心5分鐘,，棄上清(含裂解的紅細胞),。
  4. 重復上述步驟直至沉淀呈白色(白細胞團塊)。

步驟2：細胞裂解與DNA釋放

• 目的：裂解白細胞,，釋放基因組DNA,。
• 操作：
  1. 向白細胞沉淀中加入200μL Buffer AL(含蛋白酶K)，渦旋振蕩15秒,。
  2. 56℃水浴孵育10-30分鐘(或根據(jù)試劑盒要求),，期間每隔5分鐘渦旋一次,。
  3. 孵育后短暫離心，使管蓋液體回落,。

步驟3：DNA結合至吸附柱

• 目的：將DNA吸附到硅膠膜上,。
• 操作：
  1. 向裂解液中加入200μL無水乙醇，渦旋混勻(若試劑盒已預加乙醇,，則跳過此步),。
  2. 將混合液轉(zhuǎn)移至吸附柱(置于2mL收集管中)，8000×g離心1分鐘,。
  3. 棄收集管中廢液,，將吸附柱放回原收集管。

步驟4：洗滌純化DNA

• 目的：去除蛋白質(zhì),、鹽分等雜質(zhì),。
• 操作：
  1. 向吸附柱中加入500μL Buffer AW1，8000×g離心1分鐘,，棄廢液,。
  2. 加入500μL Buffer AW2(含乙醇)，14000×g離心3分鐘,，去除殘留乙醇,。
  3. 重復離心一次(空管)，確保吸附柱干燥,。

步驟5：DNA洗脫與收集

• 目的：將純化的DNA從吸附柱上洗脫,。
• 操作：
  1. 將吸附柱轉(zhuǎn)移至新的1.5mL離心管，向膜中央加入100-200μL預熱至65℃的Buffer AE,。
  2. 室溫靜置5分鐘,，8000×g離心1分鐘。
  3. 可選擇重復洗脫一次以提高回收率(將洗脫液重新加入吸附柱,，再次離心),。

三、關鍵注意事項

1. 溫度控制
   • 蛋白酶K裂解步驟需在56℃進行,，溫度過低會導致裂解不完全,。
   • 洗脫液預熱至65℃可提高DNA洗脫效率。
2. 乙醇添加
   • 若洗滌液需自行添加乙醇,，務必使用無水乙醇,，并確保終濃度符合試劑盒要求。
3. 離心條件
   • 離心速度和時間需嚴格遵循說明書,，避免DNA斷裂或吸附不完全,。
4. 避免污染
   • 所有操作應在無菌條件下進行,，使用無DNA酶的耗材和移液器吸頭,。

四,、結果評估

• 濃度與純度：使用分光光度計測定DNA濃度(A260)和純度(A260/A280=1.8-2.0)。
• 完整性：通過瓊脂糖凝膠電泳檢測DNA條帶(主帶應集中于基因組DNA大小區(qū)域),。

五,、常見問題與解決方案