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Nature 常客,?一文弄懂 LNP,,內(nèi)附制備 Protocol | MCE

來(lái)源:MedChemExpress LLC   2025年04月07日 15:17  

脂質(zhì)納米顆粒,做藥物遞送的小伙伴一定不陌生,!遙想當(dāng)年,,小 M 也是看著同門拿著儀器擠膜,做表征,,來(lái)來(lái)回回……本期就給大家整理下關(guān)于脂質(zhì)納米顆粒那些事兒~

 

01

脂質(zhì)納米顆粒

 LIPID NANOPARTICLES

脂質(zhì)納米顆粒 (Lipid Nanoparticle,,LNP) 是一種脂質(zhì)類物質(zhì)組成的納米粒子,具有均勻脂質(zhì)核心,,廣泛用于小分子和核酸藥物的遞送 (詳見(jiàn)往期:藥物如何遞送 ,?脂質(zhì)納米顆粒!),。

LNP 通常由可電離陽(yáng)離子脂質(zhì) (Ionizable lipids),、膽固醇、PEG 脂質(zhì) (PEGylated lipids),、結(jié)構(gòu)脂質(zhì) (輔助脂質(zhì)) 四個(gè)部分構(gòu)成,,一個(gè)典型的 LNP 包含多種組分以及包載內(nèi)容 (Payload)。

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圖 1. 脂質(zhì)納米顆?;窘M成[1],。

 

表 1. 脂質(zhì)納米顆粒組成、特點(diǎn)及應(yīng)用[1-8],。

image.png

 

脂質(zhì)納米顆粒遞送系統(tǒng)的優(yōu)勢(shì):

• 低免疫原性,、具有良好的生物相容性和安全性

• 穩(wěn)定性強(qiáng),在體內(nèi)不易變形

• 核酸包封率高

• 細(xì)胞穿透性強(qiáng),、轉(zhuǎn)染效率高

• 內(nèi)體逃逸能力強(qiáng)

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02

 如何制備,?

  HOW TO PREPARE?

脂質(zhì)納米顆粒 (LNP) 的制備依賴于自組裝的能力,帶負(fù)電荷的核酸和帶正電荷的脂質(zhì)之間產(chǎn)生靜電絡(luò)合,LNP 通過(guò)脂質(zhì)組分之間的疏水作用和范德華作用相互生長(zhǎng),。

LNP 的制備可以通過(guò)多種方式進(jìn)行,,例如脂質(zhì)囊泡的擠出、脂質(zhì)膜的再水化,、納米沉淀,、微流體混合,一般的制備方式是將水和脂質(zhì)成分快速混合,。小 M 為大家整理了高分文獻(xiàn)中常用的制備方案,,大家可以根據(jù)自己的實(shí)驗(yàn)?zāi)康倪M(jìn)行脂質(zhì)搭配比例上的調(diào)整~

具體操作 (供參考[9])
LNP 制劑的制備 

• 天平稱取 15 mg DLin-MC3-DMA (MC3),然后加入 200 μL 純乙醇溶解 MC3,,使其濃度達(dá)到 75 mg/mL;

• 天平稱取 10 mg DSPC,,然后加入 1.0 mL 純乙醇溶解,終濃度為 10 mg/mL;
• 天平稱取 10 mg 膽固醇,,加入 1.0 mL 純乙醇溶解,,終濃度為 10 mg/mL;
• 天平稱取 10 mg DMG-PEG,然后加入 1.0 mL 純乙醇溶解,,終濃度為 10 mg/mL;
• 將 13.3 μL DLin-MC3-DMA 溶液,、24.6 μL DSPC 溶液、46.4 μL  膽固醇溶液和 11.7 μL DMG-PEG 溶液,,充分混合得到澄清的混合溶液 I,。混合溶液 I 每 μL 純乙醇中含有 19 μg 的總脂質(zhì),。

 

mRNA 包載物

mRNA 應(yīng)溶解在 10 mM 檸檬酸鹽緩沖液 (10 mM,,pH 4) 中,將上述步驟中得到的脂質(zhì)混合溶液與含有 mRNA 的水性緩沖液快速混合以實(shí)現(xiàn) 40/1 (總脂質(zhì)/mRNA,,wt/wt) 的最終重量比,。

注:mRNA 比例可以增加以降低潛在的脂質(zhì)毒性

 

mRNA –LNP 的制備

有三種常用的方法可以實(shí)現(xiàn)混合脂質(zhì)溶液和 mRNA 溶液的快速混合:移液管混合法 (小規(guī)模制備)、渦旋混合法 (中等規(guī)模制備) 和微流體混合法 (大規(guī)模制備) ,。

 

01
移液管混合法 (小規(guī)模制備)

1. 將 16.8 μL 上面得到的混合溶液 I 加入不含 RNA 酶的 1.5 mL 試管中,;

2. 向試管中加入 1.2 μL 乙醇,充分混勻得到混合溶液 II,;

3. 取另一個(gè)不含 RNA 酶的 1.5 mL 試管,,加入 46 μL 檸檬酸緩沖液 (10 mM,pH 4),,向試管中加入 8 μL mRNA (1.0 mg/mL),,混合均勻;

4. 取 54 μL mRNA 緩沖液 加入步驟 2 中獲得的混合溶液 II,立刻吹打混勻 20-30s (手動(dòng)混勻);

注:水:乙醇的體積比為 3:1,,混合后立即吹打混勻,。否則可能影響 mRNA-LNP 混合物的活性,。

5. 將步驟 4 得到的溶液在室溫下孵育 15 min;

6. 使用透析管 (MWCO 3500) 在 1 x PBS 中透析上述溶液 1 h 以上,,以除去乙醇和酸性緩沖液,;

7. 透析后,將溶液轉(zhuǎn)至不含 RNA 酶的 1.5 mL 試管中,,測(cè)量體積;

8. 加入 1 x PBS 溶液,,使總體積達(dá)到 800 μL。

注:這步得到的溶液可以在 4℃ 短期保存,。 

 

02
渦旋混合法 (中等規(guī)模制備)

1. 將 21 μL 上面得到的混合溶液 I 加入不含 RNA 酶的 1.5 mL 試管中,;

2. 向試管中加入 9 μL 乙醇,充分混勻得到混合溶液 II,;

3. 取另一個(gè)不含 RNA 酶的 1.5 mL 試管,,加入 80 μL 檸檬酸鹽緩沖液 (10 mM,pH 4),,向試管中加入10 μL mRNA (1.0 mg/mL),,混合均勻;

4. 將渦旋混合器設(shè)備設(shè)置為“ON”,速度水平設(shè)置為“1”;

5. 在渦旋混合器上以中速渦旋 mRNA 緩沖液,,再移取 30 μL 混合溶液 II 快速加入渦旋溶液中,將所得混合溶液渦旋 20-30 S;

注:水:乙醇的體積比為 3:1,,混合后立即吹打混勻,。否則可能影響 mRNA-LNP 混合物的活

6. 將步驟 5 所得溶液在室溫下孵育 15 min;

7. 使用透析管(MWCO 3500) 在 1 x PBS 中透析上述溶液 1 h 以上,以除去乙醇和酸性緩沖液;

8. 透析后,,將溶液轉(zhuǎn)至不含 RNA 酶的 1.5 mL 試管中,,測(cè)量體積;

9. 加入 1 x PBS 溶液,使總體積達(dá)到 1000 μL,。

注:這步得到的溶液可以在 4℃ 短期保存,。

 

03
微流體混合法 (大規(guī)模制備)

具體操作方案使用儀器相關(guān)度很高,建議參考具體使用的儀器步驟進(jìn)行,。


 

 


03

 LNP 的表征

  Characterization of LNPs


為了確保 LNP 的質(zhì)量和有效性,,需要對(duì) LNP 進(jìn)行參數(shù)表征,例如尺寸,、PDI,、電荷、RNA EE,。


• Zeta (平均直徑/粒徑): 通過(guò)動(dòng)態(tài)光散射 (DLS) 檢測(cè),。

• PDI (Polydispersity index, 多分散指數(shù)) :范圍 0-1,數(shù)值越高表示多分散性越強(qiáng),,數(shù)值越小表示粒度越均勻,,通過(guò)動(dòng)態(tài)光散射 (DLS) 檢測(cè)。

• Charge (電荷):對(duì)于基于 RNA 的 LNP,通常優(yōu)選近中性電荷,,通過(guò) ζ 電位分析儀測(cè)量,。

• Morphology (形態(tài)):通過(guò)電子顯微鏡 (TEM、Cyro-EM,、SEM,、AFM 等) 檢測(cè)。

• RNA EE (RNA Encapsulation Efficieney%, RNA 包封效率) :可通過(guò) Ribogreen 測(cè)定來(lái)測(cè)量,,先測(cè)定 LNP 外的 RNA 濃度,,然后使用表面活性劑溶解 LNP 來(lái)測(cè)量 LNP 內(nèi)部和外部的總 RNA 濃度,計(jì)算公式如下:

 

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畫板 1 副本 7(1).jpg

圖 2. LNP 的表征參數(shù)與相關(guān)檢測(cè)儀器[10],。

 

 

04

脂質(zhì)納米顆粒的發(fā)展

DEVELOPMENT OF LIPID NANOPARTICLES

LNP 是目前臨床應(yīng)用上最-廣泛的核酸藥物遞送載體,,目前已有近 80 種基于 LNP 為遞送載體的基因藥物進(jìn)入臨床開(kāi)發(fā)階段,大大加速了基因治療的發(fā)展[10],。但是,,LNP 在實(shí)際應(yīng)用中仍存在許多問(wèn)題,其一是因?yàn)?LNP 在經(jīng)過(guò)體循環(huán)后通常在肝部富集,,對(duì)其他給藥器官的靶向困難[11],。其二是 LNP 只能作為載體參與藥物遞送,無(wú)法協(xié)同 mRNA 治療,。

目前針對(duì) LNP 體系的改良都和這兩個(gè)方向有關(guān),。包括通過(guò)對(duì) LNP 基本四組分的改造與優(yōu)化增加 mRNA 遞送效率并提高安全性,或者通過(guò)引入第五組分來(lái)改善肝外靶向遞送[12],。

另外一種主流的優(yōu)化方案是通過(guò)引入帶修飾的脂質(zhì)原料,,對(duì) LNP 表面改性實(shí)現(xiàn)精準(zhǔn)靶向。例如上面提到過(guò)的,,使用馬來(lái)酰胺化 PEG 脂質(zhì),,與蛋白\抗體相連接,實(shí)現(xiàn)靶向組織,、器官或細(xì)胞,。

后續(xù)我們會(huì)出一期推文整理不同的修飾基團(tuán)在其中的作用,以及如何設(shè)計(jì) LNP 感興趣的老師可以繼續(xù)關(guān)注~

 

 

產(chǎn)品推薦

Cholesterol (HY-N0322)

是一種哺乳動(dòng)物中的主要固醇,,占質(zhì)膜結(jié)構(gòu)成分的 20-25%,。

DSPE-PEG 2000 (HY-142979)

是一種含有 DSPE 和胺端末基的 PEG 聚合物。DSPE-PEG 2000 可用于形成膠束作為藥物遞送的納米顆粒,。

Lipid 5 (HY-138171)

是一種氨基脂質(zhì),,可在嚙齒動(dòng)物和靈長(zhǎng)類動(dòng)物模型中提供有效的 mRNA 遞送。

DOPG sodium (HY-141571)

是一種天然存在的陰離子磷脂,,可以在水溶液中形成脂質(zhì)雙層,,并用于生成膠束,、脂質(zhì)體和其他人工膜。

OptiLNP RNA 轉(zhuǎn)染試劑 (肺部靶向) (HY-K2025)

是一種基于脂質(zhì)納米粒 (LNP) 技術(shù)開(kāi)發(fā)的即用型轉(zhuǎn)染試劑,,適用于實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的 mRNA 和短鏈 RNA 通過(guò)靜脈注射給藥的肺部靶向遞送,。

OptiLNP RNA 轉(zhuǎn)染試劑 (干細(xì)胞) (HY-K2019)

是一種基于脂質(zhì)納米粒 (LNP) 技術(shù)開(kāi)發(fā)的即用型轉(zhuǎn)染試劑,適用于不同類型的 RNA 在免疫細(xì)胞中的轉(zhuǎn)染,。

Firefly luciferase mRNA-LNP (HY-153229)

是一種已包裹 Firefly luciferase mRNA 的脂質(zhì)納米粒 (LNP),,適用于 RNA 傳遞、翻譯效率,、細(xì)胞活力等檢測(cè),。

 

參考文獻(xiàn):

[1] Jung HN,et al. Lipid nanoparticles for delivery of RNA therapeutics: Current status and the role of in vivo imaging. Theranostics. 2022 Oct 24;12(17):7509-7531.

[2] Vallazza B,et al. Recombinant messenger RNA technology and its application in cancer immunotherapy, transcript replacement therapies, pluripotent stem cell induction, and beyond. Wiley Interdiscip Rev RNA. 2015 Sep-Oct;6(5):471-99.

[3] Kowalski PS,et al. Delivering the Messenger: Advances in Technologies for Therapeutic mRNA Delivery. Mol Ther. 2019 Apr 10;27(4):710-728.

[4] Sebastiani F, et al.Apolipoprotein E Binding Drives Structural and Compositional Rearrangement of mRNA-Containing Lipid Nanoparticles. ACS Nano. 2021 Apr 27;15(4):6709-6722.

[5] Reichmuth AM,et al. mRNA vaccine delivery using lipid nanoparticles. Ther Deliv. 2016;7(5):319-34.

[6] Eygeris Y,et al. Chemistry of Lipid Nanoparticles for RNA Delivery. Acc Chem Res. 2022 Jan 4;55(1):2-12.

[7] Knop K,et al. Poly(ethylene glycol) in drug delivery: pros and cons as well as potential alternatives. Angew Chem Int Ed Engl. 2010 Aug 23;49(36):6288-308.

[8] Parhiz H,et al. PECAM-1 directed re-targeting of exogenous mRNA providing two orders of magnitude enhancement of vascular delivery and expression in lungs independent of apolipoprotein E-mediated uptake. J Control Release. 2018 Dec 10;291:106-115.

[9] Wang X,et al. Preparation of selective organ-targeting (SORT) lipid nanoparticles (LNPs) using multiple technical methods for tissue-specific mRNA delivery. Nat Protoc. 2023 Jan;18(1):265-291.

[10] Ma Y,et al. A perspective of lipid nanoparticles for RNA delivery. Exploration (Beijing). 2024 Apr 15;4(6):20230147.

[11] Witzigmann D,et al. Lipid nanoparticle technology for therapeutic gene regulation in the liver. Adv Drug Deliv Rev. 2020;159:344-363.

 

 



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