重組腺病毒在研究和治療應(yīng)用中具有巨大的潛力。  

使用腺病毒將遺傳物質(zhì)引入宿主細(xì)胞具有諸多優(yōu)勢,。其允許的宿主細(xì)胞范圍非常廣泛。該病毒已被用于感染許多哺乳動物細(xì)胞類型（包括增殖性和非增殖性細(xì)胞）,，以實(shí)現(xiàn)重組蛋白的高效表達(dá),。重組腺病毒尤其適用于那些通過脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染效率較低的細(xì)胞系中的基因轉(zhuǎn)移和蛋白表達(dá)。病毒進(jìn)入細(xì)胞后,，保持染色體外狀態(tài)（即不整合到宿主染色體中,，因此不會激活或失活宿主基因）。最近,，重組腺病毒已被用于將RNAi導(dǎo)入細(xì)胞,。  

HEK 293細(xì)胞或其變體被用作病毒擴(kuò)增的宿主細(xì)胞。重組腺病毒可以在高滴度下生長（101?病毒顆粒/mL,，可濃縮至1013病毒顆粒/mL）,。濃縮后的病毒上清液通過CsCl超速離心，將病毒與細(xì)胞蛋白和培養(yǎng)基成分分離,。超速離心后,，通過透析去除CsCl。CsCl程序既繁瑣又耗時(shí)（16-24小時(shí)）,。  

艾美捷ViraBind腺病毒微量純化試劑盒不涉及超速離心,，而是基于腺病毒衣殼蛋白的d特性質(zhì)，通過離心柱捕獲病毒,。整個(gè)過程大約需要30分鐘,。每個(gè)離心柱設(shè)計(jì)用于從一個(gè)T75培養(yǎng)瓶或10厘米培養(yǎng)皿中收獲的病毒進(jìn)行純化,，容量可達(dá)1.0×1011病毒顆粒。  

ViraBind 腺病毒小量純化試劑盒提供了一個(gè)高效的系統(tǒng),，用于快速純化腺病毒,，回收率超過95%。

ViraBind腺病毒微量純化試劑盒相關(guān)產(chǎn)品：  

1. AD-100：293AD細(xì)胞系  

2. AD-200：ViraDuctin 腺病毒轉(zhuǎn)導(dǎo)試劑,，10次轉(zhuǎn)導(dǎo)  

3. VPK-109：QuickTiter 腺病毒滴度免疫測定試劑盒  

4. VPK-111：快速RCA測定試劑盒  

5. VPK-252：RAPAd® CMV腺病毒表達(dá)系統(tǒng)    

ViraBind腺病毒微量純化試劑盒（#VPK-099）組成：  

1. ViraBind 離心柱和收集管（部件編號40991）：10個(gè)迷你離心柱和20個(gè)收集管的包裝,。  

2. 上樣緩沖液（部件編號40992）：一瓶10 mL。  

3. 洗滌緩沖液（部件編號40993）：一瓶20 mL,。  

4. 洗脫緩沖液（部件編號40994）：一瓶10 mL,，含25 mM Tris，pH 7.5,，2.5 mM MgCl?,，1 M NaCl。    

未提供材料：  

1. 感興趣的重組腺病毒  

2. HEK 293細(xì)胞及細(xì)胞培養(yǎng)生長培養(yǎng)基  

3. 細(xì)胞培養(yǎng)離心機(jī)  

4. 甘油  

5. 微量離心機(jī)  

儲存：將所有試劑盒組分儲存于室溫,。

安全注意事項(xiàng)：請記住,，您將處理含有感染性病毒的樣本。請遵循NIH推薦的針對BSL-2生物體的所有材料的指南,。

感染細(xì)胞裂解液的收獲：  

以下程序適用于T75培養(yǎng)瓶,，可根據(jù)個(gè)人需求進(jìn)行優(yōu)化。  

1. 使用HEK 293細(xì)胞,，這些細(xì)胞應(yīng)在感染前定期傳代2-3次,。將這些細(xì)胞培養(yǎng)至單層細(xì)胞達(dá)到90-100%匯合。  

2. 用新的生長培養(yǎng)基替換細(xì)胞培養(yǎng)基,，每瓶15 mL,。然后將腺病毒加入培養(yǎng)物中?？梢允褂么种苹蚣兓牟《編齑?。每細(xì)胞期望的感染復(fù)數(shù)（PFU，噬菌斑形成單位）為0.5到2,。  

3. 24小時(shí)后,，部分細(xì)胞應(yīng)處于懸浮狀態(tài)。向培養(yǎng)瓶中加入10 mL生長培養(yǎng)基,，并讓病毒再擴(kuò)增24小時(shí),。當(dāng)所有細(xì)胞都處于懸浮狀態(tài)時(shí)，輕輕搖晃培養(yǎng)瓶數(shù)次,，并將所有培養(yǎng)基（包括細(xì)胞）收獲到無菌管中,。  

4. 以1000 rpm離心5分鐘，沉淀細(xì)胞。將細(xì)胞沉淀重懸于0.8 mL培養(yǎng)基中,，并通過三次凍融循環(huán)從細(xì)胞中釋放腺病毒,。將上清液轉(zhuǎn)移到另一個(gè)微量離心管中，并丟棄細(xì)胞碎片,。  

5. 以10,000 rpm離心10分鐘,，進(jìn)一步沉淀任何剩余的細(xì)胞碎片。丟棄沉淀,，保存上清液,。如果仍可見大量細(xì)胞碎片，再次離心上清液,。  

注意：此步驟有助于防止在病毒純化步驟中離心柱堵塞,。  

6. 病毒上清液可在-80°C下保存，或立即進(jìn)行純化（見以下純化說明）,。   

結(jié)果示例：  

以下圖表展示了典型的純化結(jié)果,。以下數(shù)據(jù)僅供參考，不應(yīng)用于解釋實(shí)際結(jié)果,。

圖上：重組Ad-β Gal的純化,。根據(jù)純化說明純化重組Ad-β Gal病毒。在純化過程中獲得的每個(gè)組分及其稀釋液用于感染12孔板中的A549細(xì)胞,。48小時(shí)后,，進(jìn)行X-gal染色，并對β Gal陽性細(xì)胞（藍(lán)色）進(jìn)行計(jì)分,。

圖下：由激活的H-Ras誘導(dǎo)的膜褶皺,。COS-7細(xì)胞以50 MOI（感染復(fù)數(shù)）的感染量被純化的Ad-β Gal或Ras G12V感染。感染48小時(shí)后進(jìn)行X-gal染色,。通過用羅丹明偶聯(lián)的鬼筆環(huán)肽染色肌動蛋白細(xì)胞骨架，可視化膜褶皺,。

ViraBind腺病毒微量純化試劑盒文獻(xiàn)參考：

1. Stewart, P. L., Fuller, S. D., and Burnett, R. M. (1993) EMBO J. 12, 2589-2599.

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3. Huang, S., Stupack, D., Mathias, P., Wang, Y., and Nemerow, G. (1997) Proc. Natl. Acad. Sci.

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4. Bergelson, J. M., J. A. Cunningham, G. Droguett, E. A. Kurt-Jones, A. Krithivas, J. S. Hong, M. S.

Horwitz, R. L. Crowell, and R. W. Finberg. (1997) Science 275:1320-1323.

5. Von Seggern, D. J., C. Y. Chiu, S. K. Fleck, P. L. Stewart, and G. R. Nemerow. (1999) J. Virol.

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6. Kleinerman, D. I., W. W. Zhang, S. H. Lin, N. T. Van, A. C. von Eschenbach, and J. T. Hsieh.

(1995) Cancer Res. 55:2831-2836.