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類器官培養(yǎng)總是不成功,活學(xué)活用經(jīng)典培養(yǎng)方案WENR是關(guān)鍵!

來源:北京義翹神州科技股份有限公司   2025年03月17日 16:41  

前言

類器官已成為生命科學(xué)和醫(yī)學(xué)研究領(lǐng)域的“明星模型”,,在疾病機(jī)制研究,、藥物篩選、精準(zhǔn)醫(yī)療等方面展現(xiàn)出巨大潛力,。然而,,許多科研人員在嘗試類器官培養(yǎng)時,常常面臨“無法形成結(jié)構(gòu)”,、“細(xì)胞活性低”,、“傳代失敗”等問題。

探究其根本,,培養(yǎng)體系中細(xì)胞因子的選擇和配比可能是成敗的關(guān)鍵,!

接下來,我們將會結(jié)合類器官經(jīng)典培養(yǎng)方案WENR(Wnt3a,、EGF,、Noggin、R-Spondins),,解析“四大護(hù)法”如何各顯神通,,助你攻克類器官培養(yǎng)難關(guān)!

 

 

01 WENR何以成為類器官培養(yǎng)經(jīng)典,?

類器官的經(jīng)典培養(yǎng)方案WENR(或稱為WNER)最初由荷蘭Hubrecht研究所的Hans Clevers團(tuán)隊(duì)開發(fā),,其核心成分包括Wnt-3a、EGF,、Noggin和R-Spondins,。常被稱為類器官培養(yǎng)的“四大護(hù)法”,。

WENR方案在類器官的研究與實(shí)踐中不斷演化,通過與其他細(xì)胞因子或小分子抑制劑的巧妙結(jié)合,,衍生出適用于多種類器官構(gòu)建的培養(yǎng)條件,。目前,WENR方案已在胃,、小腸,、結(jié)腸、胰腺,、肝臟等多種類器官培養(yǎng)中得到廣泛應(yīng)用,。

2.jpg

WENR方案用于多種類器官培養(yǎng)(源自Bindi M. Doshi, PhD.

 

02 WENR“四大護(hù)法”

1 Wnt-3a:干細(xì)胞增殖的“發(fā)動機(jī)”

Wnt-3a作為經(jīng)典Wnt通路的激活劑,通過穩(wěn)定β-catenin蛋白,,啟動下游靶基因(如c-Myc,、Cyclin D1),參與細(xì)胞發(fā)育,、增殖和分化過程,。Alessandra Merenda在其綜述中深入總結(jié)了Wnt信號通路在類器官領(lǐng)域的關(guān)鍵作用。文中指出,,無論成體干細(xì)胞組織來源如何,,其衍生的類器官在增殖、干性維持及終末分化特化細(xì)胞等關(guān)鍵環(huán)節(jié),,都依賴于經(jīng)典Wnt信號通路,。如在小鼠結(jié)腸類器官的建立過程中,添加外源性Wnt-3a對其增殖至關(guān)重要,。不添加Wnt-3a,,類器官超過3天后無法存活。

3.jpg

Wnt-3a在腸類器官中培養(yǎng)中的作用(源自文獻(xiàn):doi: 10.1016/j.tcb.2019.10.003)

 

2 EGF:細(xì)胞增殖的“加速器”

表皮生長因子(EGF)與受體結(jié)合,,激活MAPK/ERK通路,,促進(jìn)細(xì)胞增殖和存活。EGF刺激上皮細(xì)胞增殖,、血管生成和表皮細(xì)胞分化,,促進(jìn)類器官三維結(jié)構(gòu)的形成。EGF廣泛應(yīng)用于胃腸道,、肝臟,、甲狀腺等類器官培養(yǎng),促進(jìn)細(xì)胞集落形成和組織結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性,。盡管EGF并非類器官形成的必需因子,,但能顯著增加類器官體積。

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優(yōu)化的WENR方案在人胃腸道類器官構(gòu)建過程中的應(yīng)用(源自文獻(xiàn):doi: 10.1186/s13619-020-00040-w)

 

3 Noggin:抑制分化的“守門員”

在類器官構(gòu)建過程中,,Noggin與細(xì)胞增殖密切相關(guān),。Noggin是一種骨形態(tài)發(fā)生蛋白(BMP)的內(nèi)源性抑制劑,,通過阻斷BMP與受體結(jié)合,促進(jìn)干細(xì)胞增殖,,為類器官形成提供充足的細(xì)胞,。Noggin還通過抑制BMP信號通路,,維持干細(xì)胞干性,,影響細(xì)胞的命運(yùn)決定和分化過程。

 

在類器官培養(yǎng)中,,Noggin常與Wnt-3a和R-Spondins一起使用,,以平衡BMP和Wnt信號通路,促進(jìn)類器官的生長和分化,。因此,,Noggin在類器官培養(yǎng)中不僅促進(jìn)增殖,還精細(xì)調(diào)控細(xì)胞的分化,。

5.jpg

Noggin抑制細(xì)胞增殖的分子機(jī)制(源自文獻(xiàn):doi: 10.1242/bio.20149977)

 

4 R-Spondins:Wnt信號的“放大器”

R-spondin是Wnt信號通路的激活劑,,通過與Frizzled和LRP5/6受體結(jié)合,增強(qiáng)Wnt信號在多種組織中的表達(dá),,促進(jìn)干細(xì)胞增殖與類器官結(jié)構(gòu)形成,。T. Thalheim等人發(fā)現(xiàn),沒有R-spondin時,,類器官在4-5天后停止生長,。在1.2% R-spondin濃度下培養(yǎng)的類器官生長非常迅速,生長時間超過5天后經(jīng)常破裂,,其管腔內(nèi)積累了大量細(xì)胞碎片,。在10%或25% R-spondin濃度下培養(yǎng)的類器官生長速度比1.2%稍慢,但不會破裂,。

6.jpg

不同濃度的R-spondin影響腸類器官的生長狀態(tài)(源自文獻(xiàn):doi: 10.1016/j.ydbio.2017.10.013)

 

03 WENR實(shí)戰(zhàn)避坑Tips

Wnt過度激活會導(dǎo)致類器官結(jié)構(gòu)紊亂,,因此Wnt-3a濃度需嚴(yán)格控制。并且R-spondin需要和Wnt-3a協(xié)同使用,,單獨(dú)使用效果有限,。建議根據(jù)類器官類型優(yōu)化Wnt-3a的濃度,一般為50-100 ng/mL,。在培養(yǎng)后期也可以動態(tài)調(diào)控其濃度,。

 

EGF易被蛋白酶降解,建議使用無血清培養(yǎng)基,。EGF長期高濃度,,可能會誘導(dǎo)異常分化,建議定期更換培養(yǎng)基,。EGF一般使用濃度為50 ng/mL,。在腫瘤類器官(如腸癌)中,,其濃度需根據(jù)癌細(xì)胞特性調(diào)整。

 

Noggin與Wnt-3a協(xié)同作用,,支持胃,、腸道、肝臟,、肺,、胰腺等類器官的長期培養(yǎng)。在肺類器官培養(yǎng)中,,Noggin缺失會導(dǎo)致肺泡上皮細(xì)胞過早分化,。在肝類器官中,其與Wnt3a的“雙劍合璧”是長期傳代的關(guān)鍵,。BMP信號的過度激活會導(dǎo)致類器官形成囊狀結(jié)構(gòu),,失去功能性隱窩結(jié)構(gòu)。

S-spondin有4個亞型(RSPO1-4),,不同組織來源的類器官可能需特異性選擇,。Wnt-3a和R-spondin易失活,建議分裝后-80℃保存,。

 

常見問題排查表,,僅供參考:

問題現(xiàn)象

可能原因

解決方案

類器官結(jié)構(gòu)松散

Wnt3a活性不足

提高Wnt3a濃度或更換高活性批次

細(xì)胞大量死亡

EGF降解或濃度過低

縮短換液周期,驗(yàn)證EGF生物活性

傳代后無法增殖

Noggin/R-Spondin比例失調(diào)

重新優(yōu)化因子配比,,檢查消化步驟

 

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義翹神州開發(fā)的高質(zhì)量WENR系列細(xì)胞因子,,具有低內(nèi)毒素、高批間一致性,、高生物活性等特點(diǎn),,滿足您的多種類器官培養(yǎng)需求。

細(xì)胞因子

貨號

純度

活性

Wnt-3a

WNT007-02H

≥ 90% (SEC-HPLC)

Active

EGF

GMP-10605-HNAE★

≥ 95% (SEC-HPLC)

Active

10605-HNAE

≥ 95% (SEC-HPLC)

Active

50482-M01H

≥ 95%

Active

50482-MNCH

≥ 95%

Active

NOG

10267-HNAH

≥ 95% (SEC-HPLC)

Active

50688-M02H

> 85%

Active

RSPO1

11083-HNAS

≥ 95% (SEC-HPLC)

Active

50316-M08S

> 95%

Active

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【參考文獻(xiàn)】

1 Nick Barker, et al. Lgr5(+ve) stem cells drive self-renewal in the stomach and build long-lived gastric units in vitro. Cell Stem Cell. 2010. doi: 10.1016/j.stem.2009.11.013.

2,、 Toshiro Sato, Hans Clevers. SnapShot: Growing Organoids from Stem Cells. Cell. 2015. doi: 10.1016/j.cell.2015.06.028.

3,、Bindi M. Doshi, PhD. Crucial Niche Factors for Organoid Cultures. 

4JuneSung Bae, et al. The Patient-Derived Cancer Organoids: Promises and Challenges as Platforms for Cancer Discovery. Cancers (Basel). 2022. doi: 10.3390/cancers14092144.

5,、Alessandra Merenda, Nicola Fenderico, Madelon M Maurice. Wnt Signaling in 3D: Recent Advances in the Applications of Intestinal Organoids. Trends Cell Biol, 2020. doi: 10.1016/j.tcb.2019.10.003.

6,、Zhang, M., Liu, Y. & Chen, YG. Generation of 3D human gastrointestinal organoids: principle and applications. Cell Regen, 2020. doi.org/10.1186/s13619-020-00040-w

7Kimberly A Wong, et al. Efficient retina formation requires suppression of both Activin and BMP signaling pathways in pluripotent cells. Biol Open, 2015. doi: 10.1242/bio.20149977.

8,、Torsten Thalheim, et al. Linking stem cell function and growth pattern of intestinal organoids. Developmental Biology, 2018. doi.org/10.1016/j.ydbio.2017.10.013

 

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