谷胱甘肽過氧化物酶(GPX)活性檢測試劑盒
(可見分光光度法)
產(chǎn)品貨號:BA1115
產(chǎn)品規(guī)格:50管/24樣
產(chǎn)品簡介:
谷胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase, GSH-Px/GPX)是機體內(nèi)廣泛存在的一種重要的過氧化物分解酶。GPX能夠催化還原型谷胱甘肽(GSH)生成氧化型谷胱甘肽(GSSG),,使有毒的過氧化氫還原成無毒的羥基化合物,。
GPX催化H2O2氧化GSH,,產(chǎn)生GSSG,,GSH能與DTNB生成在412nm處有特征吸收峰的化合物,,412nm下吸光度的下降即可反應(yīng)GPX的活性,。
注意:實驗之前建議選擇2-3個預(yù)期差異大的樣本做預(yù)實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內(nèi)建議稀釋或者 增加樣本量進(jìn)行檢測,。
產(chǎn)品內(nèi)容:
試劑名稱 | 規(guī)格 | 保存條件 |
提取液 | 液體40mL×1瓶 | 2-8℃ |
試劑一 | 粉劑×1瓶 | 2-8℃ |
試劑二 | 粉劑×1瓶 | 2-8℃ |
試劑三 | 液體20 μL×1支 | 2-8℃ |
試劑四 | 液體60mL×1瓶 | 2-8℃ |
試劑五 | 液體15mL×1瓶 | 2-8℃ |
試劑六 | 液體15mL×1瓶 | 2-8℃ |
標(biāo)準(zhǔn)品 | 粉劑×1支 | 2-8℃ |
溶液的配制:
1. 試劑一:臨用前加入5.5mL蒸餾水溶解,;
2. 試劑二:臨用前加入6.6mL蒸餾水充分溶解待用;
3. 試劑三:液體置于試劑瓶內(nèi)EP管中,。臨用前按1μL試劑三:1mL蒸餾水的比例稀釋試劑三,,現(xiàn)用現(xiàn)配;
4. 試劑四:瓶底若有結(jié)晶可50℃水浴溶解,,此溶液為飽和溶液,,若底部最終還有結(jié)晶,吸取上清使用即可;
5. 標(biāo)準(zhǔn)品:10mg還原型谷胱甘肽,。臨用前加入1.62mL蒸餾水溶解為20μmol/mL的標(biāo)準(zhǔn)溶液備用,。
需自備的儀器和用品:
可見分光光度計、天平,、臺式離心機,、1mL玻璃比色皿、可調(diào)式移液槍,、研缽/勻漿器,、EP管。
操作步驟:
一,、粗酶液的提?。?/span>
1. 組織:按照組織質(zhì)量(g):提取液體積(mL)為 1:5~10的比例(建議稱取0.05g組織,加入1mL提取液)進(jìn)行冰浴勻漿,。10000rpm,,4℃離心10min,取上清置冰上待測(如上清不清澈,,再離心3min),。
2. 細(xì)菌、真菌:按照細(xì)胞數(shù)量104個:提取液體積(mL)500~1000:1的比例,,建議500萬細(xì)胞加入1mL提取液),,冰浴超聲波破碎細(xì)胞(率300w,超聲3 s,,間隔7s,,總時間3min)然后10000rpm,4℃,,離心10min,,取上清置冰上待測(如上清不清澈,再離心3min),。
3. 血清(漿)等液體:直接測定,。
二、測定步驟:
1. 分光光度計預(yù)熱30min以上,,調(diào)節(jié)波長至412nm,,蒸餾水調(diào)零。
2. 將20μmol/mL標(biāo)準(zhǔn)液用提取液稀釋為0.2μmol/mL的標(biāo)準(zhǔn)溶液,。再吸取100μL標(biāo)準(zhǔn)溶液與400μL試劑四混勻待用,,此標(biāo)準(zhǔn)液混合物的濃度為0.04μmol/mL。標(biāo)準(zhǔn)液混合物現(xiàn)用現(xiàn)配,。
3. 樣本混合物:將150μL樣本與150μL試劑一混合后室溫放置5min,。
4. 操作表:(在1.5mL離心管中依次加入下列試劑)
測定管 | 對照管 | |
樣品混合物(μL) | 100 | - |
試劑二(μL) | 100 | 100 |
37℃下預(yù)熱5min | ||
試劑三(μL) | 100 | 100 |
37℃下反應(yīng)5min | ||
試劑四(mL) | 1 | 1 |
樣品混合物(μL) | - | 100 |
4000rpm常溫離心5min,取上清,。
試劑名稱(μL) | 測定管 | 對照管 | 標(biāo)準(zhǔn)管 | 空白管 |
蒸餾水 | 100 | 100 | 100 | 100 |
提取液 | - | - | - | 100 |
上清液 | 500 | 500 | - | - |
標(biāo)準(zhǔn)液混合物 | - | - | 500 | - |
試劑四 | - | - | - | 400 |
試劑五 | 200 | 200 | 200 | 200 |
試劑六 | 200 | 200 | 200 | 200 |
混勻后盡快測定412nm下的吸光度,,分別記為A測定管、A對照管,、A標(biāo)準(zhǔn)管,、A空白管。計算△A測定=A對照管-A測定管,,△A標(biāo)準(zhǔn)=A標(biāo)準(zhǔn)管-A空白管,。 |
三:GPX活性計算:
1. 抑制百分率的計算
抑制百分率=(A對照管-A測定管) ÷(A對照管-A空白管)× 100%
盡量使樣品的抑制百分率在30-70%范圍內(nèi),越靠近50%越準(zhǔn)確,。如果計算出來的抑制百分率小于30%或大于70%,,則通常需要調(diào)整加樣量后重新測定。如果測定出來的抑制百分率偏高,,則需適當(dāng)稀釋樣品,;如果測定出來的抑制百分率偏低,則需重新準(zhǔn)備濃度比較高的待測樣品,。
2. GPX活性計算
(1)按蛋白濃度計算
活力單位定義:每mg蛋白在反應(yīng)體系中每分鐘催化1nmol GSH氧化定義為一個酶活力單位,。
GPX (U/mg prot) =ΔA測定÷(△A標(biāo)準(zhǔn)÷C標(biāo))×1000×V酶促÷(Cpr×V樣)÷T
=208×ΔA測定÷△A標(biāo)準(zhǔn)÷Cpr。
(2)按樣本鮮重計算
活力單位定義:每g樣品在反應(yīng)體系中每分鐘催化1nmol GSH氧化定義為一個酶活力單位,。
GPX (U/g 鮮重)= ΔA測定÷(△A標(biāo)準(zhǔn)÷C標(biāo))×1000×V酶促÷(V樣÷V樣總×W)÷T
=208×ΔA測定÷△A標(biāo)準(zhǔn)÷W,。
(3)按細(xì)胞數(shù)量計算
活力單位定義:每104個細(xì)胞在反應(yīng)體系中每分鐘催化1nmol GSH氧化定義為一個酶活力單位。
GPX (U/104 cell)= ΔA測定÷(△A標(biāo)準(zhǔn)÷C標(biāo))×1000×V酶促÷(細(xì)胞數(shù)量×V樣÷V樣總)÷T
=208×ΔA測定÷△A標(biāo)準(zhǔn)÷細(xì)胞數(shù)量,。
(4)按液體體積計算
活力單位定義:每毫升液體在反應(yīng)體系中每分鐘催化1nmol GSH氧化定義為一個酶活力單位,。
GPX (U/mL)= ΔA測定÷(△A標(biāo)準(zhǔn)÷C標(biāo))×1000×V酶促÷V樣÷T=260×ΔA測定÷△A標(biāo)準(zhǔn)。
C標(biāo):標(biāo)準(zhǔn)液混合物的濃度:0.04μmol/mL,;V酶促:酶促反應(yīng)體系體積,,1.3mL;V樣:樣本混合物中含有的樣本體積,,0.05mL,;V樣總:提取液體積,1mL,;Cpr:上清液蛋白濃度(mg/mL),;T:反應(yīng)時間,5min,;細(xì)胞數(shù)量:以萬計,;W:樣品質(zhì)量,g,;1000:換算系數(shù),,1μmol=1000nmol。
注意事項:
1. 吸光度若大于1.2時,建議將樣本用提取液稀釋后進(jìn)行測定,。
2. 建議一次不要做過多樣本以免檢測時間過長影響顯色,,使測定不準(zhǔn)確。
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