一、miRNA提取的方法

miRNA提取的難點在于其分子太小,，不易被醇類沉淀,，也不易被常規(guī)的硅膠吸附膜吸附。miRNA的提取方法主要有兩種形式,，一種是提取樣品中的總RNA后,，通過PAGE電泳或PEG，將總RNA中的小片段RNA分離出來,，最后對小片段的RNA進行沉淀回收,，從而獲得miRNA。另一種是硅膠柱吸附法,，采用特殊硅基質吸附材料在添加適量乙醇的條件下,，可特異吸附小片段RNA（小于200nt），最終得到miRNA,。傳統(tǒng)方法提取miRNA通常采用第一種,，而miRNA提取試劑盒一般采用硅膠柱吸附法。前者的主要缺點在于實驗步驟較為繁瑣,，影響因素較多,，最終獲得的miRNA純度較差，不利于后續(xù)實驗,；而后者操作簡便,，獲得的miRNA純度良好。

二,、miRNA提取的操作流程

miRNA提取
Vazyme動物細胞和組織miRNA柱式提取試劑盒-MiPure Cell／Tissue miRNA Kit（ Vazyme #RC201),。

·Vazyme ＃RC201產品優(yōu)勢

1．高效的提取效率：有效分離長度20～200nt的小片段RNA。

2．簡便的操作流程：結合高效的RNA Isolater抽提試劑和硅膠柱純化技術,，1h內完成miRNA提取,。

3．廣泛的適用性：提取的miRNA純度高，兼容常規(guī)qPCR,、Northern雜交,、芯片分析及miRNA文庫構建。

Vazyme ＃RC201實驗案例-一非常高的提取效率

使用 MiPure Cell ／Tissue miRNA Kit （Vazyme ＃RC201）與total RNA提取試劑（Trizol）分別從等量樣本（細胞或小鼠肝臟組織）中提取miRNA,、total RNA,，瓊脂糖凝膠電泳檢測等量產物，結果如下圖所示：對于細胞或小鼠組織,，Vazyme ＃RC201提取得到的產物中不含有大分子RNA,，如18S、28S rRNA,。通過qPCR實驗檢測等量產物中miR-16基因,，結果顯示，Vazyme ＃RC201 對于miRNA的提取產量優(yōu)于Trizol法,。

注意事項

1．本制品的裂解液RNA Isolater中含有C6H6O,，具有毒性和腐蝕性。如果吸入體內,、接觸皮膚,、吞食等會導致中毒、灼傷以及其他身體傷害,。使用本制品時應穿戴防護物品,，如防護服裝、手套,、面罩等,。

2．所有操作步驟，如果沒有特別指出,，均在常溫條件下（15～25℃）進行,。

3．RNA得率和質量與組織樣本用量和洗脫體積有關，建議每1ml RNA Isolater 裂解 10～100mg組織,，或不多于5x106個細胞,。洗脫體積應不少于30μl，否則會影響RNA的得率,。

4．使用本試劑盒時,，請穿戴實驗服、一次性乳膠手套、一次性口罩等,，最大限度的避免RNase 污染,。

5．樣本的選擇及保存會很大程度上影響RNA的產量以及質量。應盡可能的采用新鮮的動物組織或細胞進行RNA提取,。如果采集的樣本暫不提取RNA,，可以將新采集的樣本立即置于液氮中速凍后于-70℃保存，并且避免反復凍融,，或者將樣本立即置于RNA Isolater裂解液中勻漿后,，置于-70℃保存。為了避免RNA的降解,，樣本的采集與保存應盡可能迅速地進行,。

6．樣本破碎需全部破壞細胞膜及細胞器以釋放RNA，破碎不充分將影響RNA的產量,，勻漿時盡量低溫,，防止因勻漿過程中產生的熱量導致RNA降解。

7．RNA在RNA Isolater中不會被 RNase 污染,，但裂解后處理過程應保證RNase-free環(huán)境,。

8．本試劑盒可去除體系中基因組DNA，純化獲得的RNA通常無需使用DNase處理即可用于下游實驗操作,。如果下游實驗對痕量的DNA十分敏感,，可以選用商業(yè)化RNase-freeDNase 全部清除。

實驗流程

1．樣品的處理

樣品的均質化處理是所有RNA提取所必需的步驟,。通過吹打或勻漿讓細胞或組織塊快速分散,、細胞壁和細胞質膜破裂，從而使核酸釋放到裂解液中,。均質化不充分可能會導致RNA產量和純度下降,。下面列舉了幾種常見的樣品均質化處理方法：

1.1 液氮處理

切取適量組織稱重，置于預冷的研缽中,，迅速加入液氮,，將組織研磨成粉末，然后將粉末倒入預冷的離心管中（注意：預先冷卻離心管,，否則樣品倒入時,，液氮沸騰會造成樣品損失）。待液氮全部揮發(fā)后,，加入適量的RNA Isolater渦旋混勻,。由于液氮研磨只能起到打散樣品的作用，所以最好再用注射器吹打或機械勻漿器勻漿,，以降低裂解液的粘稠度,。

1.2機械勻漿器勻漿

機械勻漿器能高效勻漿大部分組織和細胞，并同時起到打散和勻漿的作用。把樣品置于合適的1～5ml玻璃管或離心管中,，加入RNA Isolater,，把轉子插入RNA Isolater中，低溫高速間斷勻漿,，每次為10～30sec,，間隔相同時間直至樣品全部勻漿。使用機械勻漿器時,，一般組織都可以在一分鐘內達到理想的勻漿效果。大部分的機械勻漿器都帶有不同大小的轉子,，小體積的裂解液適合使用較小的轉子,。

1.3 玻璃勻漿器

把樣品和適量的裂解液轉移至玻璃勻漿器中，上下推磨直至組織塊被充分打散,。

2．RNA的提取

小分子RNA的提取可分為細胞小分子RNA和動物組織小分子RNA,，不同小分子RNA的提取均可使用Vazyme ＃RC201，提取原理及流程概要如下：

2.1 細胞小分子的RNA的提取

該方案適合于從少于5x106個培養(yǎng)細胞樣品中富集小分子RNA（＜200nt）,。

（1）收集細胞,。

a．懸浮培養(yǎng)細胞：計算細胞數量，300g離心5min收集細胞,，小心棄除培養(yǎng)液,，按2.1中的第2步進行操作。

b.貼壁細胞：貼壁細胞可在培養(yǎng)瓶／皿中直接裂解,，也可經胰酶消化后離心收集,。

直接裂解：計算細胞數量，全部棄除培養(yǎng)液,，按2.1中的第2步進行操作,。

胰酶消化處理：計算細胞數量，棄除培養(yǎng)液,，加入適量PBS清洗細胞,，棄除PBS，再加入含0.1～0.25％胰酶（Trypsin）的PBS消化細胞,。當細胞從壁上脫落后,，加入含血清的培養(yǎng)液，并轉移至離心管,，300g離心5min,。收集細胞，按2.1中的第2步進行操作,。

（2）加入1ml RNA Isolater至細胞樣品中,，渦旋或吸打處理細胞沉淀團。

離心收集的細胞：先彈打使細胞松散，再加入1ml RNA Isolater,，用移液槍吸打10～15次全部打散細胞,。貼壁細胞直接裂解：全部棄除培養(yǎng)液后，向培養(yǎng)瓶或培養(yǎng)皿中加入1 ml RNAIsolater,。用槍吹打使細胞從壁上全部脫落,，收集裂解液，并轉移至離心管中,。

（3）室溫放置2～3min 讓細胞充分裂解,。

此時樣品可在2～8℃保存一周，-20℃至-70℃保存六個月以上,。

（4）加入200μlCHCL3至裂解液中,，用手劇烈振蕩15sec，室溫靜置3min,。

用渦旋取代振蕩可能會帶入基因組DNA污染,。

（5）4℃，12,000 rpm（13,400xg）離心15 min,。吸取500μl的上清液至新的1.5ml離心管中,。

請小心吸取上清水相，避免吸到中間層和下層有機相而影響后續(xù)提取結果,。

（6）加入160μl的無水乙醇至上清液中,，渦旋混勻10sec。（以下離心均在室溫下進行）

（7）把RNA柱（MiPure RNAspin Column）置入2ml收集管（Collection Tube）,。將上述混合液轉移至RNA柱中12,000rpm（13,400xg）離心30 sec,。

（8）加入0.9倍體積的無水乙醇至濾液中，用移液槍吸打混勻3～5次,。

舉例：若濾液體積為640μl,，則需加入576μl無水乙醇。

（9）把miRNA柱（MiPure miRNA Column）置入2ml收集管中,。轉移一半體積的混合液至miRNA柱中12,000rpm（13,400xg）離心30 sec,。

（10）棄濾液，把miRNA柱置回收集管中,。轉移剩余混合液至miRNA柱中,，12,000 rpm（13,400xg）離心30sec。

（11）棄濾液,，把miRNA柱置回收集管中,。加入500 μl Buffer miRW1（已加乙醇）至miRNA柱中，室溫放置1min,，12,000 rpm（13,400xg）離心30sec,。

（12）棄濾液,，把miRNA柱置回收集管中。加入500 μl Buffer miRW2（已加乙醇）至miRNA柱中,，室溫放置1min,，12,000 rpm（13,400xg）離心30sec。

（13）棄濾液,，把miRNA柱置回收集管中,。加入500μl80％乙醇（需用RNase-freeddH2O新鮮配制）至miRNA柱中，室溫放置1 min,，12,000 rpm（13,400xg）離心30 sec,。

（14）棄濾液，把miRNA柱置回收集管中,。12,000rpm（13,400xg）離心空柱2min,，甩干miRNA柱的基質。這一步可全部去除miRNA柱中殘留的乙醇,。

（15）將miRNA柱轉移至新的1.5ml離心管，室溫晾干2~5min,加入MiPure miRNA Column 最小的洗脫體積是30μl,，小于30μl會致RNA的洗脫效率下降,。

（16）丟棄miRNA柱，收集的miRNA樣品于-70℃保存,。

2.2 動物組織小分子RNA的提取

該方案適合于從少于100mg動物組織中富集小分子RNA（＜200nt）,。

（1）組織用量：組織用量是RNA產量和純度的關鍵因素。試劑盒的組織用量可低至0.01mg,，但最大的組織用量取決于樣品中RNA,、蛋白質和雜質的含量。

動物腦組織,、脂肪組織,，RNA含量較低，組織最大用量可至100mg,。

動物肝臟,、脾臟、腎臟,、胸腺等,，含有豐富的RNA，組織用量不要超過20mg,。

心臟,、肌肉、皮膚含有中豐度的RNA,，組織用量不要超過50mg,。

＊MiPure miRNA Column結合能力為200μg,。過多的組織用量會造成RNA降解及大分子RNA的污染。如果處理的組織沒有相關的信息,，推薦第一次起始用量為30mg,，根據獲得的結果來提高或降低組織的用量。

（2）組織的裂解和勻漿：按10～100mg的組織量,，加入1ml RNA Isolater,。

（3）室溫放置2～3min讓組織充分裂解。

（4）（可選）4℃,，12,000rpm（13,400xg）離心10min,。小心吸取上清液至新的離心管中。

處理脂肪樣品時,，離心后溶液表面會飄浮一層油脂類,，小心轉移下層清液至新管。

（5）加入200μlCHCL3至裂解液或上清液中,。用手劇烈振蕩15 sec,，室溫靜置3min。

用渦旋取代振蕩可能會帶入基因組DNA污染,。

（6）4℃,，12,000 rpm（13,400xg）離心15min。吸取500μl上清液至新的1.5ml離心管中,。

請小心吸取上清水相,，避免吸到中間層和下層有機相而影響后續(xù)提取結果。

按2.1的第6～16步進行操作富集小分子RNA,。

三,、miRNA提取的常見FAQ

離心后分層不明顯？

1．沒有加CHCL3或CHCL3不純：確保加入CHCL3,，且不含有3-甲基丁醇或其它添加成分,。

2．加入CHCL3后混勻效果不好：加入CHCL3后，一定要劇烈振蕩混勻15sec,。顛倒或渦旋會導致分離不明顯或引入DNA污染,。如果離心后分離不明顯，重復振蕩和靜置,，然后再離心,。

3．樣品中含有機溶劑：若樣品含有有機溶劑如DMSO、乙醇,、強堿試劑會影響分層,。

RNA產量低？

1．樣品勻漿不充分：處理培養(yǎng)細胞時,，反復吹打裂解液進行裂解,；處理動物組織時,，推薦使用機械勻漿器勻漿。

2．樣品起始用量太多：根據說明書給出的參考用量及實際情況來決定樣品用量,。

3．RNA的洗脫效率低：RNase-free ddH2O沒有加到膜上,，或洗脫體積不夠?？杉尤腩A熱的30～50 μl RNase-free ddH2O到膜上,，室溫靜置2min，然后離心洗脫RNA,。

RNA降解,？

1．組織／細胞用量太多：減少樣品用量，正確的樣品用量是獲得理想結果的必要條件,。

2．RNase 污染：操作過程避免RNase的污染,。戴一次性干凈手套；在單獨潔凈的區(qū)域操作,；戴口罩并在操作過程中避免講話,；使用RNase-free的實驗器具，包括槍頭和離心管,；RNA實驗所用器具與試劑都應專用,，避免混用后造成交叉污染；RNase-free ddH2O建議分裝后保存,。

下游實驗結果不理想？

1．鹽分污染：加入Buffer miRW2或80％乙醇后,，靜置2min后再離心,。

2．乙醇污染：空柱離心轉速高于或等于12,000rpm（13,400xg），離心時間為2min,。

3．膜材料脫落：脫落到產物中的硅膠膜是不溶解的,，可通過12,000rpm（13,400xg）離心2min，僅分離含有小RNA的液體成分保存,。

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