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超全熒光定量PCR應(yīng)用常見問題匯總,!

來源:上海炎熙生物科技有限公司   2024年11月11日 14:29  

實(shí)時(shí)熒光定量技術(shù)是什么



20世界90年代由美國(guó)Applied Biosystems公司推出實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)(Real-time qPCR),其基本原理是在常規(guī)PCR基礎(chǔ)上添加熒光染料或熒光染料探針,,利用熒光信號(hào)積累實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)整個(gè)PCR過程,。熒光定量PCR最大的優(yōu)勢(shì)可以對(duì)初始模板進(jìn)行定量,目前已廣泛應(yīng)用于生命科學(xué),、醫(yī)學(xué)研究等領(lǐng)域,。



常見問題羅列

沒有CT值

實(shí)驗(yàn)結(jié)果一旦遇到?jīng)]有Ct值情況,就要在第一時(shí)間排查是否有以下問題:


(1)循環(huán)數(shù)不夠(但是一般不超過45循環(huán),,不僅背景值提高,,定量也不準(zhǔn));

(2)PCR程序設(shè)置不對(duì),,檢測(cè)熒光信號(hào)的步驟有誤,。一般SG法采用72℃延伸時(shí)采集,TaqMan法則一般在退火結(jié)束時(shí)或延伸時(shí)采集信號(hào),,另外熒光采集是否選中,;

(3)引物或探針降解??赏ㄟ^PAGE電泳檢測(cè)引物和探針是否降解,;

(4)模板量可能降解或上樣量不足(但一般不超過500ng,根據(jù)試劑盒說明書即可),,對(duì)未知濃度的樣品應(yīng)從系列稀釋樣本的最高濃度做起,;如果發(fā)生模板降解,應(yīng)考慮樣品準(zhǔn)備中雜質(zhì)的引入及反復(fù)凍融的情況,,建議將模板樣品小量分裝儲(chǔ)備,,避免反復(fù)凍融;

(5)引物探針是否合適(尤其是引物跨越內(nèi)含子,,以確保擴(kuò)增基因組DNA,;上下游引物Tm值超過4℃以上也會(huì)影響擴(kuò)增)。

CT值過晚

在相對(duì)定量中,,Ct值一般控制在15~25之間比較好,,如果在絕對(duì)定量中,對(duì)低拷貝數(shù)的樣品,,Ct值會(huì)增大,,但是一般不宜超過40循環(huán),否則定量不準(zhǔn)確,。因此,,判斷Ct值出現(xiàn)過晚是否屬于非正常情況,需要根據(jù)具體實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)和目的進(jìn)行,。


(1)擴(kuò)增效率低,。引物之間或者引物和探針的比例不合適,需要進(jìn)行優(yōu)化,;引物或探針設(shè)計(jì)不合理,,需要重新設(shè)計(jì);

(2)PCR程序不合適,改用三步法進(jìn)行反應(yīng),,或者優(yōu)化退火/延伸溫度,,可以適當(dāng)降低退火溫度;退火/延伸時(shí)間短(可以在推薦的時(shí)間條件下延長(zhǎng)10s),;

(3)MgCl2濃度不合適,,增加鎂離子濃度等。PCR各種反應(yīng)成分的降解或加樣量的不足,;

(4)PCR產(chǎn)物太長(zhǎng),。PCR產(chǎn)物設(shè)計(jì)超過500bp;

(5)模板中存在抑制物,。用高純度模板進(jìn)行PCR檢測(cè)或?qū)⒛0暹M(jìn)行稀釋,。


標(biāo)準(zhǔn)曲線線性關(guān)系不佳

如果遇到標(biāo)準(zhǔn)曲線線性關(guān)系不佳R2<0.9的情況,那么很有可能是以下環(huán)節(jié)存在問題:


(1)標(biāo)準(zhǔn)品稀釋或者加樣存在誤差,,吸樣不準(zhǔn),,使得標(biāo)準(zhǔn)品不呈梯度;


(2)標(biāo)準(zhǔn)品出現(xiàn)降解,。應(yīng)避免標(biāo)準(zhǔn)品反復(fù)凍融,,將高濃度DNA模板分裝,保存于-20℃或-80℃,,不要反復(fù)凍融,,現(xiàn)配現(xiàn)用;


(3)引物或探針不佳,。重新設(shè)計(jì)更好更穩(wěn)定的引物或探針,;


(4)模板中存在抑制物。模板濃度過高,,根據(jù)現(xiàn)有商品化熒光定量試劑盒的要求,,一般模板量不超過500ng,以50~500ng為宜,。

陰性對(duì)照擴(kuò)增有信號(hào)

如果陰性對(duì)照擴(kuò)增有信號(hào),,首先排查各操作環(huán)節(jié)是否有不當(dāng),造成交叉污染:


(1)引物設(shè)計(jì)不夠優(yōu)化,。應(yīng)避免引物二聚體和發(fā)夾結(jié)構(gòu)的出現(xiàn),。


(2)引物濃度不佳。適當(dāng)降低引物濃度,,并注意上下游引物的濃度配比,。


(3)鎂離子濃度過高。適當(dāng)降低鎂離子濃度,,或選擇更適合的mix試劑盒,。


(4)模板有基因組的污染,。RNA提取過程中避免基因組DNA的引入,或通過引物設(shè)計(jì)避免非特異性擴(kuò)增,。


(5)交叉污染,。在所用的試劑中有交叉污染,或操作環(huán)境中有氣溶膠造成污染,,建議對(duì)操作環(huán)境進(jìn)行處理,,或者更換新的環(huán)境,、加樣器,、槍頭以及所有的引物、試劑等,。


熔解曲線峰不特異

如果熔解曲線峰不特異,,那么很有可能是以下環(huán)節(jié)存在問題:


(1)引物設(shè)計(jì)不夠優(yōu)化。應(yīng)避免引物二聚體和發(fā)夾結(jié)構(gòu)的出現(xiàn),,這是最主要因素,;引物濃度不佳,尤其是涉及二聚體存在時(shí),,適當(dāng)降低引物濃度,,并注意上下游引物的濃度比例;


(2)離子濃度不合適,。適當(dāng)降低鎂離子濃度,,或選擇更適合的mix試劑盒,不同試劑盒在該方面的優(yōu)化能力不適合,,有些情況下可以通過更換試劑盒改善結(jié)果,;


(3)模板有基因組污染。RNA提取過程中避免基因組DNA的引入,,或通過引物設(shè)計(jì)避免非特異性擴(kuò)增,。

擴(kuò)增效率低

該情況適用于針對(duì)所有的基因,特別是內(nèi)參基因仍無法獲得較好的擴(kuò)增信號(hào)時(shí),,應(yīng)考慮如下情況:


(1)反應(yīng)試劑中部分成分比例是否最佳,,另外考慮熒光染料是否降解;


(2)反應(yīng)條件不夠優(yōu)化,??蛇m當(dāng)降低退火溫度或改為三步擴(kuò)增法,適當(dāng)延長(zhǎng)變性退火時(shí)間,;


(3)反應(yīng)體系中有PCR反應(yīng)抑制物,。一般是加入模板時(shí)所引入的,應(yīng)先把模板適度稀釋,,再加入反應(yīng)體系,,減少抑制物的影響,。

擴(kuò)增曲線的異常

如果遇到擴(kuò)增曲線異常,比如“S”型曲線等等情況,,那么很有可能是以下環(huán)節(jié)存在問題:


(1)模板的濃度太高或者降解,;

(2)熒光染料的降解;

(3)在操作熒光定量PCR時(shí),,帶上新的一次性手套,,蓋上避免任何指紋或者字跡等;

(4)液體揮發(fā),。耗材氣密性等問題引起液體蒸發(fā),,沒有很好的聚集在管子里;

(5)氣泡,。操作問題如移液槍加樣引起的氣泡問題,。


參考文獻(xiàn):

Troubleshooting Guide for qPCR and RT qPCR kits (EUROGENTEC)



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