1. 無擴增條帶
（1）酶失活或在反應體系中未加入酶,。Taq DNA聚合酶因保存或運輸不當而失活,，往往通過更換新酶或用另一來源的酶以獲得滿意的結果。
（2）模板含有雜質,。特別是對甲醛固定及石蠟包埋的組織常含甲酸,，造成DNA脫嘌呤而影響PCR的結果。
（3）變性溫度是否準確：PCR儀指示溫度與實際溫度是否相符,，過高酶在前幾個循環(huán)就迅速失活,；過低則模板變性不好。
（4）反應系統(tǒng)中污染了蛋白酶及核酸酶,，應在未加Taq酶以前,，將反應體系95℃加熱5-10分鐘。
（5）引物變質失效,。人工合成的引物是否正確。是否純化,，或因儲存條件不當而失活,。
（6）引物錯誤。利用BLAST檢查引物特異性或重新設計引物,。
（7）DNA凝膠電泳時加入陽性對照,，確保不是DNA凝膠和PCR程序的問題。

2. PCR產物量過少
（1） 退火溫度不合適,。以2度為梯度設計梯度PCR反應優(yōu)化退火溫度,。
（2） DNA模板量太少。增加DNA模板量,。
（3） PCR循環(huán)數(shù)不足,。增加反應循環(huán)數(shù)。
（4） 引物量不足,。增加體系中引物含量,。
（5） 延伸時間太短。以1kb/分鐘的原則設置延伸時間,。
（6） 變性時間過長,。變性時間過長會導致DNA聚合酶失活。
（7） DNA模板中存在抑制劑,。確保DNA模板干凈

3. 擴增產物在凝膠中涂布或成片狀條帶彌散
（1）酶量過高,。減少酶量,；酶的質量差，調換另一來源的酶,。
（2）dNTP濃度過高,。減少dNTP的濃度。
（3）MgCl2濃度過高,?？蛇m當降低其用量。
（4）模板量過多,。質粒DNA的用量應<50ng,，而基因組DNA則應<200ng。
（5）引物濃度不夠優(yōu)化,。對引物進行梯度稀釋重復PCR反應,。
（6）循環(huán)次數(shù)過多；增加模板量減少循環(huán)次數(shù)至30,，縮短退火時間及延伸時間,，或改用二種溫度的PCR循環(huán)。
（7）退火溫度過低,。
（8）電泳體系有問題：
①凝膠中緩沖液和電泳緩沖液濃度相差太大,；
②凝膠沒有凝固好；
③瓊脂糖質量差,。
（9）若為PCR試劑盒則可能：
①由于運輸儲存不當引起試劑盒失效,；
②試劑盒本身質量有問題，如引物選擇,、循環(huán)參數(shù)等選擇不當,。
（10）降解的陳舊模板擴增也易產生涂布。

4. 擴增產物出現(xiàn)多條帶 （雜帶）
（1）引物用量偏大,，引物的特異性不高,。應調換引物或降低引物的使用量。
（2）循環(huán)的次數(shù)過多,。適當增加模板的量,，減少循環(huán)次數(shù)。
（3）酶的用量偏高或酶的質量不好,，應降低酶量或調換另一來源的酶,。
（4）退火溫度偏低，退火及延伸時間偏長,。應提高退火溫度,，減少變性與延伸時間，也可采用二種溫度的PCR擴增。以2度為梯度設計梯度PCR反應優(yōu)化退火溫度,。
（5）樣品處理不當,。
（6）Mg2+濃度偏高，因適當調整Mg2+使用濃度,。
（7）若為PCR試劑盒,，也可能時試劑盒本身質量有問題。
（8）復制提前終止,。使用非熱啟動的聚合酶時常有發(fā)生,。冰上準備反應體系或采用熱啟動聚合酶。
（9）反應緩沖液未融化或未充分混勻,。確保反應緩沖液融化并混勻,。
（10）引物特異性差。利用BLAST檢查引物特異性或重新設計引物,。
（11）引物量過多,。減少反應體系中引物的用量。
（12）模板量過多,。質粒DNA的用量應<50ng,，而基因組DNA則應<200ng。
（13）外源DNA污染,。確保操作的潔凈,。

5.陰性對照出現(xiàn)條帶
試劑，槍頭,，工作臺污染,。使用全新的試劑和槍頭，對工作臺進行清潔,。

6.條帶大小與理論不符
1) 污染。使用全新的試劑和槍頭,，對工作臺進行清潔,。
2) 模板或引物使用錯誤。更換引物和模板,。
3) 基因亞型,。對研究的基因進行序列分析和BLAST研究