激光共聚焦顯微鏡可以觀察到細胞內(nèi)已經(jīng)標記好的蛋白質(zhì)和分子,,為生物學(xué)研究提供了更直觀的觀測方法,。如今,,激光共聚焦成像已經(jīng)是一個非常常規(guī)的實驗操作,,廣泛應(yīng)用于生物學(xué)各個研究領(lǐng)域中。
在細胞實驗中,如果要進行一次激光共聚焦成像,,除了要知道相關(guān)的顯微鏡參數(shù)設(shè)置和操作以外,,樣品的準備也是非常重要的一個環(huán)節(jié)。
由于激光共聚焦實驗對觀測耗材的底部有著比較高的要求,,普通的培養(yǎng)皿,,培養(yǎng)板或者培養(yǎng)瓶都不能直接用于激光共聚焦成像。
1.比較常用的是使用170μm左右厚度的蓋玻片作為激光共聚焦成像的細胞載體,。但是使用蓋玻片,,在實驗操作上是非常麻煩的,如果買的是國產(chǎn)的蓋玻片,,首先要做的一步是將蓋玻片清洗并且烘干滅菌,,才能開始使用。
2.進口的細胞爬片,,雖然不需要清洗,,但是還是需要進行包被才能讓細胞正常貼壁生長。通常是將處理好爬片直接放在多孔板中,,然后鋪細胞,熒光染色后,,再用鑷子將爬片拿出,,反過來放在滴有封片劑(甘油配置)的載玻片上,再進行成像,。如圖1所示:

圖1:使用蓋玻片和細胞爬片的做免疫熒光方法示意圖
操作流程:
1.蓋玻片需用濃硫酸浸泡過夜,,第二天用自來水沖洗20遍,置于無水乙醇中6小時,,后用三蒸水沖洗3遍,,再放在飯盒或玻璃培養(yǎng)皿中烘干,消毒,,再烘干后放入超凈臺備用,。
2.準備好的蓋玻片或者專業(yè)的細胞爬片需要根據(jù)細胞的貼壁情況使用多聚賴氨酸等蛋白包被。
3.培養(yǎng)板中放置爬片非常有技巧,,要將爬片與培養(yǎng)板底部緊密貼合,,這樣才能避免長成雙層細胞。
4.常規(guī)免疫熒光操作后,,取出爬片,。準備載玻片一張,在中間滴加適量的封片劑(甘油配置),,將蓋玻片或爬片翻過來,,蓋在封片劑上,再用指甲油封片進行成像。
5.在激光共聚焦成像之前,,盡量用熒光顯微鏡檢查一下細胞狀態(tài)和成像效果,,再去做激光共聚焦,畢竟做一次激光共聚焦的成像也不便宜的,。
ibidi無需爬片的簡便方法
這里要介紹ibidi的簡便方法,,大大簡化了樣品準備流程,需要用到專為共聚焦實驗設(shè)計的共聚焦培養(yǎng)皿,,這里以德國ibidi的共聚焦培養(yǎng)皿為例(ibidi 81156,,ibiTreat底部處理)進行說明。共聚焦培養(yǎng)皿的底部是polymer聚合物材質(zhì),,具有親水表面,,讓大多數(shù)種類的細胞都可以直接貼壁,無需另外進行包被,;同時,,它們的底部符合蓋玻片標準——厚度僅為180μm,在折射率,,阿貝系數(shù)上,,它們的性能和標準爬片一致,再加上極低的自發(fā)熒光和細胞可以直接貼壁的特性,,使它們成為共聚焦成像的專用培養(yǎng)皿,。
所有的操作都在培養(yǎng)皿中進行,不再需要鑷子以及繁瑣的清洗,,滅菌,,包被程序(流程如圖2所示)
圖2:共聚焦專用培養(yǎng)皿的準備樣品流程,可以直接進行細胞培養(yǎng)-染色-成像操作(圖中使用的產(chǎn)品為ibidi 81156共聚焦培養(yǎng)皿)
操作流程:
1.在超凈臺中打開無菌包裝的共聚焦專用培養(yǎng)皿,,取出培養(yǎng)皿,,加入細胞懸液,蓋上皿蓋,,放入培養(yǎng)箱中靜置,,等待細胞貼壁。常規(guī)細胞培養(yǎng),,待細胞長置合適密度再取出,,進行免疫熒光染色。
2.吸出培養(yǎng)基,,以PBS清洗細胞,,再用2%的多聚甲醛PBS溶液固定細胞。
3.20分鐘后,,吸出固定液,,加入0.1%Triton X-100
4.10分鐘后,,吸出Triton,清洗細胞后加入BSA封閉,。
5.加入抗體熒光染色后,,吸出所有試劑,加入封片劑,,可以開始共聚焦顯微成像,。
使用共聚焦培養(yǎng)皿還有個好處:往往一個共聚焦掃描成像持續(xù)時間很長,培養(yǎng)皿中的液體非常容易揮發(fā),,共聚焦培養(yǎng)皿有皿蓋,,可以減少揮發(fā);如上述提到的ibidi共聚焦培養(yǎng)皿,,有個巧妙的鎖扣設(shè)計,,可以扣緊培養(yǎng)皿,確保在共聚焦成像的過程中,,皿中的液體不會揮發(fā)(如圖3),。
圖3:ibidi共聚焦培養(yǎng)皿的鎖扣設(shè)計
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