知識講解:細胞培養(yǎng)的步驟和注意事項
1:細胞復(fù)蘇
低溫保存的細胞從液氮中取出后,在37℃的水浴中不斷搖晃,,以促進其融化。將解凍后的細胞移入離心管,,加入37℃(胎牛血清約10%)預(yù)熱的DMEM培養(yǎng)基中,,輕輕吹掃離心,500克離心2分鐘,,丟棄上清液,。
加入DMEM清洗,并丟棄上清液,。加入DMEM全培養(yǎng)基,,輕輕吹勻,制成細胞懸液,,接種于皿/瓶中,,在含5%CO2的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
2:細胞通道
當細胞密度達到80%~90%(早產(chǎn)不足,,細胞條件不好,,1:2~1:10或以上比例傳代,一般1:3~1:5細胞發(fā)生,,即從細胞接種到分離再培養(yǎng)的一段時間內(nèi),,非細胞有絲分裂的次數(shù)),取出完整培養(yǎng)基,,洗滌兩次1x PBS,。
加入胰蛋白酶(注:消化液覆蓋細胞的最佳量,最佳消化溫度為37℃,。顯微鏡下觀察細胞:倒置顯微鏡下觀察消化細胞,。如果細胞質(zhì)收縮,細胞不再連接成碎片,,說明此時細胞的消化是合適的),,并將其放入細胞培養(yǎng)箱中約2-3分鐘。
加入適量DMEM全培養(yǎng)基停止胰蛋白酶消化,,移入離心管離心2分鐘,,棄去上清液,然后加入DMEM全培養(yǎng)基洗滌,,棄去上清液,。
加入DMEM全培養(yǎng)基,,輕輕吹勻,取10μL計數(shù),,按要求的細胞體積在含5%CO2的細胞培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng),。
3:細胞冷凍保存
當細胞密度達到80%~90%時,去除全培養(yǎng)基,,用1x PBS洗滌兩次,。加入胰蛋白酶消化,放入細胞培養(yǎng)箱約2-3分鐘,。加入DMEM全培養(yǎng)基停止胰蛋白酶消化,,移入離心管,離心500g,,離心2min,,棄去上清液,,然后加入DMEM全培養(yǎng)基洗滌,,棄去上清液。加入LML凍存液(90%胎牛血清,,10%二甲基亞砜),。一般來說,,血清含量可以在10%到90%之間調(diào)節(jié)。一方面在凍存液中加入血清可以為細胞提供營養(yǎng),,另一方面可以提供蔗糖,、白蛋白等不滲透的保護物質(zhì),在凍存過程中更好地保護細胞,。放入低溫保存管(管內(nèi)加入異丙醇,,以保證降溫速度),立即放入4℃冰箱內(nèi)冷凍30分鐘,,然后放入-20℃冰箱30分鐘,,再放入-80℃冰箱過夜。
第二天放入液氮中,,至少可以保存兩年,。如果沒有,可以保存三個月,。
細胞冷凍復(fù)蘇的原理是:緩慢冷凍和快速解凍,,這樣更有利于保持細胞的活力。不加任何保護劑的細胞低溫保存會導(dǎo)致細胞內(nèi)產(chǎn)生冰晶,,引起細胞內(nèi)的機械損傷,、滲透壓、pH值和電解質(zhì)的變化,,進而導(dǎo)致細胞死亡,。
4:注意事項
(1) 預(yù)熱培養(yǎng)液:將配制好的含培養(yǎng)液,、PBS和胰蛋白酶的瓶子放入37℃水浴中預(yù)熱;
(2) 用75%酒精擦拭超凈工作臺和紫外線照射的手;
(3) 正確放置使用過的設(shè)備:保證足夠的操作空間,既方便操作又減少污染;
(4) 酒精燈:注意火焰不要太小;
(5) 嚴格無菌操作;
(6) 貼壁細胞的消化是中等的:消化時間受多種因素的影響,,如消化液的種類,、制備時間和加入培養(yǎng)瓶中的量。在消化過程中,,應(yīng)注意培養(yǎng)細胞形態(tài)的變化,。一旦細胞質(zhì)收縮,連接變松,,或有碎片漂浮的跡象,,消化應(yīng)立即終止;
(7) 傳代細胞的所有操作應(yīng)盡可能靠近酒精燈火焰。最好一次只操作一個電池,,每個電池使用一套設(shè)備。避免交叉感染;
(8) 每次打開或關(guān)閉細胞瓶口時,,都需要在酒精燈上消毒
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