大家好，這里是專注表觀組學十余年易基因。

本期，我們聚焦DNA羥甲基化。DNA羥甲基化是近年發(fā)現(xiàn)的一種新的DNA修飾并迅速成為研究熱點,。隨著研究的深入，發(fā)現(xiàn)之前被認為是檢測DNA甲基化“金標準”的重亞硫酸鹽測序并不能區(qū)分DNA甲基化（5mC）和DNA羥甲基化（5hmC）。易基因聯(lián)合劍橋大學建立了化學氧化法結合重亞硫酸鹽轉化的測序技術（oxidative bisulfite sequencing, oxBS-Seq）,，該技術不僅可以精確檢測DNA甲基化，排除DNA羥甲基化的影響,，還可以雙文庫結合同時單堿基分辨率精確檢測DNA羥甲基化,。該方法非常適合用于需要對DNA甲基化和羥甲基化進行區(qū)分的研究測序分析。

oxBS-Seq技術原理

近日,，西南民族大學Jincheng Zhong團隊與西藏農(nóng)牧畜牧獸醫(yī)研究所Jinwei Xin團隊利用oxRRBS+RRBS技術揭示了牦牛下丘腦在神經(jīng)調(diào)節(jié)和髓鞘形成中的表觀遺傳調(diào)控機制,。該研究成果于2021年9月27日發(fā)表在《FRONT GENET》（IF:4.599）雜志上。

1.背景：

5-甲基胞嘧啶 (5mC) 和 5-羥甲基胞嘧啶 (5hmC) 都是神經(jīng)發(fā)育中重要的表觀遺傳修飾,。然而很少有研究在自然高海拔條件下鑒定動物大腦區(qū)域的全基因組5mC和5hmC模式,。

2.材料和方法：

從Riwoqe耗牛和三江牛（牛）中各選取三只54個月大的母牛，所選取的母牛在過去三代中沒有直接或間接的血緣關系,，在當?shù)厮饺宿r(nóng)場以同樣的飲食喂養(yǎng),，耗牛和牛的平均活重為188.3公斤和163.0公斤。在餓一天后進行人道處死,，解剖后迅速分離大腦,、腦干,、小腦和下丘腦，從中各收集1 cm³樣本在液氮中快速冷凍并在-80°C下儲存直至RNA和DNA提取,。

利用RRBS+oxRRBS技術鑒定牦牛和牛的大腦,、腦干、小腦,、下丘腦的基因組5mC和5hmC位點,，繪制全基因組DNA甲基化和羥甲基化圖譜，并進行DNA甲基化/羥甲基化差異化分析和對應轉錄組的關聯(lián)分析,。

3.結果：

① RRBS+oxRRBS繪制牦牛和牛的大腦,、腦干、小腦和下丘腦DNA甲基化和羥甲基化圖譜

RRBS+oxRRBS測序單堿基水平檢測牦牛和牛的大腦,、腦干,、小腦和下丘腦DNA甲基化和羥甲基化水平，平均CpG位點為3.28M,，平均深度大于10X,。

FIGURE 1：Global DNA methylation and hydroxymethylation among the samples.

（A） RRBS和oxRRBS文庫中正鏈和負鏈修飾位點差異的Violin圖

（B） Fisher精確檢驗計算RRBS和oxRRBS文庫中羥甲基化水平和p值的Volcano圖

（C） 牦牛編碼基因中的甲基化和羥甲基化分布

（D） 牛編碼基因中的甲基化和羥甲基化分布

② 牦牛和牛的下丘腦和其他大腦區(qū)域5mC和5hmC差異化分析

作者在牦牛和牛大腦區(qū)域的每次成對比較中確定差異甲基化區(qū)域（DMRs）和差異羥甲基化區(qū)域（DhMRs）。在耗牛和牛的下丘腦中發(fā)現(xiàn)大部分的DMRs和DhMRs,，差異主要在于5mC水平下降和5hmC水平升高,。作者進一步發(fā)現(xiàn)大多數(shù)DhMRs（牦牛72.9%，牛75.7%）與DMR相對應,，表明5mC和5hmC水平在同一位點“升降”,。耗牛樣本的大腦、腦干,、小腦和下丘腦組織RRBS文庫的基因DNA修飾水平?jīng)]有明顯差異,，而在牛樣本這些組織中發(fā)現(xiàn)顯著差異。因此,，作者推測5mC和5hmC水平的“升降”可能是特定組織或生物過程中的一種調(diào)節(jié)機制,，并證實了在未來研究中同時研究5mC和5hmC水平的必要性。

FIGURE 2：Identification of DMRs and DhMRs in yak and cattle.

（A）牦牛（上）和牛（下）兩種組織樣本中DMR（藍）和DhMRs（黃）的數(shù)量比較,。

（B）牦牛和牛樣本各組織RRBS文庫中總甲基化和羥甲基化分布,。

（C）對牦牛DMRs平均甲基化水平的無監(jiān)督聚類分析顯示DMRs與神經(jīng)系統(tǒng)相關的GO terms的基因富集相關聯(lián)。

（D）對牦牛DhMRs平均羥甲基化水平的無監(jiān)督聚類分析顯示DhMRs與神經(jīng)系統(tǒng)相關的GO terms基因富集相關聯(lián),。

（E）對牦牛DhMRs相關基因mRNA水平的無監(jiān)督聚類分析,，顯示與神經(jīng)系統(tǒng)相關的GO terms基因富集相關聯(lián)。

③ 轉錄組關聯(lián)分析發(fā)現(xiàn)牦牛和牛的下丘腦具有特異性基因表達模式

作者對相應的轉錄組進行關聯(lián)分析,，轉錄組測序共獲得22477個轉錄本,，這些轉錄本被注釋到GO、KEGG,、TrEMBL數(shù)據(jù)庫。與其他大腦組織相比，大多數(shù)差異表達基因(Differentially Expressed Gene,DEG)在下丘腦中發(fā)現(xiàn),，其中64.9%的DEGs在下丘腦中下調(diào),。這一結果進一步表明，5mC和5hmC水平的“升降”主要發(fā)生在CDS和內(nèi)含子區(qū)域,，可能對基因表達起調(diào)控作用,。

FIGURE 3：Identification of DEGs in yak and cattle.

（A）牦牛（藍色）和牛（黃色）各樣本組織DEGs數(shù)量比較，“NA”表示未比較,。

（B）牦牛下丘腦和大腦之間DEGs的GO terms和KEGG通路富集,。

（C）牛下丘腦和腦干之間DEGs的GO terms和KEGG通路富集。

④ 牦牛下丘腦中5mC或5hmC調(diào)控的差異表達基因在神經(jīng)調(diào)節(jié)和髓鞘形成中發(fā)揮作用

作者鑒定出652個可能受DMR或DhMR調(diào)控的基因,，在這些基因中,，上調(diào)基因的平均甲基化水平低于下丘腦下調(diào)基因，上調(diào)和下調(diào)的基因組在大腦,、腦干和小腦中均顯示出相似的基因表達水平,。表明下丘腦中顯示出不同的基因表達、DNA甲基化和羥甲基化譜,。

在前五個上調(diào)基因中,，PTGDS基因在下丘腦中高度轉錄，可能受啟動子的hypoDMR調(diào)控,。在前五個下調(diào)基因中,，髓鞘堿性蛋白（MBP）在大腦、腦干和小腦中富集,，且可能在下丘腦中受啟動子和基因的hyperDMR調(diào)控,。

FIGURE 4：DEGs associated with DMRs or DhMRs in yak.

（A）與其他腦組織相比，牦牛下丘腦與DMR/DhMR相關的DEGs平均甲基化和羥甲基化水平,，將DEGs分成上調(diào)組和下調(diào)組,。

（B）與其他腦組織相比，牦牛下丘腦中上調(diào)基因組的mRNA水平的無監(jiān)督聚類,。

（C）與其他腦組織相比,，牦牛下丘腦中下調(diào)基因組的mRNA水平的無監(jiān)督聚類。

（D）（左）耗牛最上調(diào)基因PTGDS側翼3000bp的甲基化水平,，（右）其中一個DMR區(qū)域的甲基化水平,。

（E）（左）耗牛最下調(diào)基因MBP側翼3000bp的甲基化水平，（右）其中一個DMR區(qū)域的甲基化水平,。

在牛樣本中,，作者鑒定574個可能受DMR或DhMR調(diào)控的基因，只有16.03%在下丘腦和其他大腦區(qū)域存在差異表達,。此外,，與其他組織相比,，牦牛下丘腦中前五個下調(diào)基因在牛下丘腦中也顯示下調(diào)，而牦牛下丘腦中前五個上調(diào)基因中只有一個在牛下丘腦中顯示上調(diào),。與髓鞘形成相關的下調(diào)基因MBP的mRNA水平可以通過牛下丘腦基因組高甲基化來調(diào)控,。

FIGURE 5：DEGs associated with DMRs or DhMRs in cattle.

（A）牦牛和牛DMRs/DhMRs相關上調(diào)DEGs和下調(diào)DEGs的重疊。

（B）與其他大腦區(qū)域相比,，牦牛和牛下丘腦中前五個上調(diào)基因和下調(diào)基因的mRNA水平熱圖,。

（C）（左）牛的最下調(diào)基因MBP側翼3000bp的甲基化水平，（右）其中一個DMR區(qū)域的甲基化水平,。

小結

本研究利用RRBS+oxRRBS技術發(fā)現(xiàn)牦牛和牛的下丘腦和其他大腦區(qū)域的5mC和5hmC存在顯著差異,，鑒定出差異甲基化區(qū)域（DMR）和差異羥甲基化區(qū)域（DhMR），其中大多數(shù)彼此重疊,。最后,，驗證了DMRs和DhMRs調(diào)控的差異表達基因（DEGs）可能在神經(jīng)調(diào)節(jié)和髓鞘形成中發(fā)揮重要作用?？傊Y果表明,，5mC和5hmC介導的表觀遺傳調(diào)控可能廣泛影響下丘腦的發(fā)育及其生物學功能，有助于提高高海拔條件的生理適應性,。

本研究利用的RRBS+oxRRBS是易基因的成熟優(yōu)勢DNA修飾測序技術,，該技術通過化學氧化結合重亞硫酸鹽處理首先將5hmC氧化為5fC，進而可被重亞硫酸鹽轉換成U,，從而排除了5hmC對5mC的信號干擾,，達到精確檢測基因組5mC的目的，具有實驗數(shù)據(jù)優(yōu)質(zhì),、多組學分析數(shù)據(jù)精準等優(yōu)勢,。

參考文獻：

doi.org/10.3389/fgene.2021.592135