*上樣時，請注意確保相鄰樣品泳道沒有交叉污染,。

*確保每個泳道上標(biāo)準(zhǔn)品的量都是正確的,。蛋白質(zhì)上樣過多會導(dǎo)致產(chǎn)生額外的條帶，這個問題在使用銀染凝膠時尤為突出,。

*標(biāo)準(zhǔn)品儲存不當(dāng)或反復(fù)凍融會導(dǎo)致蛋白質(zhì)降解,。

*降低電壓,、電流或縮短轉(zhuǎn)印時間

*確保轉(zhuǎn)膜緩沖液的甲醇濃度合適；可使用濃度為10–20%的甲醇,，從而去除SDS-蛋白質(zhì)復(fù)合物中的SDS,，并促進(jìn)蛋白質(zhì)與膜的結(jié)合。

*確保轉(zhuǎn)膜緩沖液的SDS濃度合適（若加入了SDS）,，SDS濃度不要超過0.02–0.04%,。過多的SDS會阻礙蛋白質(zhì)與膜的結(jié)合。

*檢查膜的孔徑和靶標(biāo)蛋白質(zhì)的大小,。小于10kDa的蛋白質(zhì)很容易穿過0.45μm孔徑的膜,。如果您的目標(biāo)蛋白質(zhì)小于10 kDa，那么最好使用0.2μm孔徑的膜,。

*增加電壓,、電流或轉(zhuǎn)印時間

*凝膠和SDS-蛋白質(zhì)復(fù)合物中的SDS會促進(jìn)蛋白質(zhì)從凝膠中洗脫，但抑制蛋白質(zhì)與膜的結(jié)合,。這種抑制作用在硝化纖維素膜上的強度大于PVDF膜,。對于難以從凝膠中洗脫的蛋白質(zhì)，如大分子量蛋白質(zhì),，可在轉(zhuǎn)膜緩沖液中加入少量SDS以改善轉(zhuǎn)印效果,。我們建議在組裝三明治前將凝膠置于含0.02–0.04% SDS的2x轉(zhuǎn)膜緩沖液（無甲醇）中預(yù)平衡10分鐘，然后使用含10%甲醇和0.01% SDS的1X轉(zhuǎn)膜緩沖液進(jìn)行轉(zhuǎn)印。

*甲醇可去除SDS-蛋白質(zhì)復(fù)合物中的SDS,，促進(jìn)蛋白質(zhì)與膜的結(jié)合,，但對凝膠本身有一些不良影響，會降低轉(zhuǎn)印效率,。甲醇可能導(dǎo)致孔徑減小,、某些蛋白質(zhì)發(fā)生沉淀以及一些堿性蛋白質(zhì)帶正電荷或變?yōu)橹行?。?yīng)確保轉(zhuǎn)膜緩沖液的甲醇濃度不高于10–20%,，并使用高質(zhì)量的分析級甲醇。

*確保每個泳道上標(biāo)準(zhǔn)品的量都是正確的,。蛋白質(zhì)上樣過多會導(dǎo)致模糊，這個問題在使用銀染凝膠時尤為突出,。

*條帶在低百分比凝膠中不能很好地分辨,。嘗試使用更高百分比的凝膠。

*如果在轉(zhuǎn)膜/檢測后條帶看起來不明顯和模糊,，可能是由于抗體濃度過高,。遵循制造商建議的稀釋度或通過斑點印跡確定最適抗體濃度。

*凝膠上的分子量標(biāo)準(zhǔn)品的量不足： 將適當(dāng)體積的分子量標(biāo)準(zhǔn)品上樣到凝膠上,。以下是我們的建議：(小型凝膠：每孔5μL（厚度0.75-1.0 mm）或每孔10μL（厚度1.5 mm）;•大凝膠：每孔10μL（厚度0.75-1.0 mm）或每孔20μL（厚度1.5 mm）)

*轉(zhuǎn)印不全或不理想： 優(yōu)化轉(zhuǎn)印條件

*樣品被煮沸： 丟棄煮沸的分裝樣品,。

*使用的分子量標(biāo)準(zhǔn)品體積過大： 加入較少的體積或使用前用蛋白質(zhì)上樣緩沖液稀釋分子量標(biāo)準(zhǔn)品,。