蛋白濃縮和換Buffer通常使用的超濾管,常用Millipore的Amicon-Ultra-15超濾管(MWCO10kD),。也有其它型號(hào)的、不同體積大小和MWCO超濾管可選,視目的蛋白的分子量與濃縮前體積,、濃縮目標(biāo)體積而定??芍貜?fù)使用,。
1、選擇合適的超濾管,,主要考慮MWCO和濃縮體積,,通常應(yīng)截留分子量不應(yīng)大于目的蛋白分子量的1/3,比如目的蛋白分子量為35kDa,,就可以選擇10kDa截留分子量的超濾管,。若目的蛋白分子量為10kD左右,,則可以用截留分子量3kD的超濾管。
2,、新買(mǎi)來(lái)的超濾是干燥的,,使用前加入MilliQ水,水量*過(guò)膜,,冰浴或冰箱里預(yù)冷幾分鐘,。然后將水倒出,即可加入蛋白液,,加入的多少,,以不超過(guò)管頂?shù)陌拙€為準(zhǔn)。操作要輕,,加入蛋白液前,,超濾管需要插在冰上預(yù)冷。
3,、平衡,。質(zhì)量和重心二者都要達(dá)到平衡。注意轉(zhuǎn)速和加速度不可太快,,否則直接損壞超濾膜,。開(kāi)始離心超濾(離心機(jī)預(yù)冷至4度)。膜與轉(zhuǎn)軸的方向根據(jù)說(shuō)明書(shū)調(diào)整(角轉(zhuǎn)離心機(jī)的情況是膜與軸垂直),。在實(shí)際使用中,,一般轉(zhuǎn)速開(kāi)的比說(shuō)明書(shū)里的要低,這樣可以延長(zhǎng)離心管的使用壽命,。
4,、當(dāng)濃縮到剩下1ml時(shí),【取50ul國(guó)產(chǎn)Bradford溶液,,加入10ul流穿,,看有沒(méi)變藍(lán)色,以此判斷超濾管是否漏掉蛋白,。如果管漏了,,將上層和流穿重新倒入新管中開(kāi)始超濾。要精確判斷是否漏管,,用5mg/ml的BSA離心10min,,再取流穿,跑蛋白膠或Bradford粗測(cè)】,,繼續(xù)加入剩下的蛋白液濃縮(在冰上操作,,防止蛋白受熱),直到濃縮液都加完為止,。離心過(guò)程中注意是否發(fā)生蛋白沉淀,,導(dǎo)致堵管,。若發(fā)生沉淀,要確定沉淀的具體原因,,是蛋白濃度過(guò)高還是Buffer不合適,;前者可用多根超濾管同時(shí)超濾,降低濃度的辦法解決,,后者的方法是換不同的Buffer,,直到蛋白不發(fā)生沉淀為止。
超濾管
5,、前面幾步用以濃縮蛋白,,如果要換Buffer,在總蛋白液濃縮至1ml左右的時(shí)候,,輕輕加入新的Buffer(經(jīng)0.22um超濾膜超濾),,再濃縮至1ml左右,連續(xù)三次,,濃縮終體積根據(jù)需要的蛋白濃度而定,,一般不多于500ul,也有濃縮至200ul以內(nèi)的情況,。按照每次至少10倍左右的體積濃縮算,,三次達(dá)到1000倍以上,基本上可以達(dá)到換buffer的目的,。
6、取出蛋白濃縮液的操作在冰上操作,,用黃槍頭(200ul)取,,輕輕順著邊緣插入槍頭,輕輕吹打,、混勻蛋白液,,注意不要碰到超濾膜,然后吸取濃縮液,,每次吸接近200ul,,直到吸完。管底剩下的一點(diǎn)濃縮液不必吸取,,否則難度太大,,有可能損壞超濾膜。加入MilliQ水到超濾管中,,沒(méi)過(guò)超濾膜,,防止膜失水變干。
離心超濾管
7,、以下是處理超濾管,,重復(fù)利用超濾管的步驟,。
8、倒出超濾管里的水,,用milliQ水輕輕潤(rùn)洗幾次,,【若管底有可見(jiàn)的蛋白沉淀,可以先加入水,,然后用槍頭吹打,,注意不要碰到膜,吹打至沉淀懸起,,然后倒掉,,不可用自來(lái)水猛沖】然后加入0.2M的NaOH溶液,室溫放置20min,,期間平衡超濾管,。再離心10min。倒出殘留的NaOH溶液,,將管芯浸入MilliQ水的燒杯(1或2L)中,放置幾個(gè)小時(shí),再換新的水,放置幾個(gè)小時(shí),,不斷稀釋NaOH濃度。50ml管和蓋子用自來(lái)水洗,,內(nèi)壁再用MilliQ水洗干凈,。
9、取出浸沒(méi)的管芯,,加至接近滿的MilliQ水,,50ml管也加滿MilliQ水,將管芯慢慢放入50ml
離心管,,排出部分水,,然后蓋上蓋子,放4度保存,,直到下次使用,。一般來(lái)說(shuō),按照上述步驟和注意事項(xiàng),,每根管用三四年不會(huì)壞,。
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