間充質(zhì)干細胞屬于成體干細胞,可在體外通過不同的方法干預下下誘導分化為骨,、軟骨及其他結(jié)締組織,,因其來源廣泛,分離無創(chuàng)傷,,較低的免疫原性,、生長周期短等特點,是組織工程種子細胞的重要來源,。
干細胞的誘導分化一方面是干細胞鑒定的主要方法,,另一方面也是干細胞功能學研究的主要途徑。采用體外條件培養(yǎng)基誘導培養(yǎng)下,,人間充質(zhì)干細胞應能夠分化為成脂肪,、骨、軟骨細胞,。成骨分化經(jīng)茜素紅染色法鑒定,。
實驗前準備
試劑:
PBS,成骨誘導分化培養(yǎng)基,,茜素紅
耗材:
NEST細胞培養(yǎng)皿,,NEST普通吸頭,NEST微量離心管
設備:
CO2培養(yǎng)箱,,顯微鏡
一、接種骨髓間充質(zhì)干細胞
取對數(shù)生長期的細胞,,按照2×105cells/cm2的細胞密度接種至包被后的細胞培養(yǎng)皿中,,將接種好的細胞培養(yǎng)皿放到37℃,,5% CO2細胞培養(yǎng)箱培養(yǎng),定期觀察細胞增殖狀態(tài),,當細胞融合度達60-70%時,,棄掉上清,加入成骨誘導分化培養(yǎng)基,。
二,、細胞分化誘導
每2-3天進行換液(定期觀察是否有污染),再放入37℃,,5% CO2細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)約2-3周,,并注意觀察細胞形態(tài)變化。根據(jù)細胞鈣鹽結(jié)晶析出和鈣質(zhì)結(jié)節(jié)形成的情況,,決定終止細胞誘導的時間,,進行下一步染色鑒定。
三,、細胞固定
用吸頭(確保吸取充分)吸去培養(yǎng)基使用適量1×PBS清洗一次,,棄去后取適量4%中性甲醛溶液細胞培養(yǎng)皿底面,室溫固30-60min,,棄去固定液再使用1×PBS清洗兩次,。
四、茜素紅染色
加入適量茜素紅染液染3-5min,,吸去茜素紅染液,,用1×PBS清洗兩次,并加入適量1×PBS避免細胞干燥,。
五,、誘導評估
顯微鏡下觀察成骨染色效果,并進行圖像采集和誘導評估,。誘導成功時,,鈣質(zhì)結(jié)節(jié)會與茜素紅染料結(jié)合后呈現(xiàn)紅色或橘紅色。
圖c 間充質(zhì)干細胞成骨誘導分化,茜素紅染色顯示鈣結(jié)節(jié)
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