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數(shù)字PCR實驗技巧攻略

來源:北京伯聯(lián)商貿(mào)有限公司   2021年09月22日 09:37  
  數(shù)字PCR(DigitalPCR)技術(shù)作為新一代核酸檢測和定量技術(shù),目前在痕量核酸樣本檢測,、復(fù)雜樣本稀有突變檢測和微小表達差異鑒定等方面表現(xiàn)出的優(yōu)勢已被普遍認可,。NGS和CRISPR等分子生物學技術(shù)的發(fā)展,,為數(shù)字PCR技術(shù)在microRNA研究,、基因組拷貝數(shù)鑒定,、致病微生物鑒定,、轉(zhuǎn)基因成分鑒定及基因細胞治療等諸多領(lǐng)域帶來了新的契機,?;谶@一功能強大的新技術(shù),如何獲得更理想的實驗結(jié)果呢?下面且聽小Q娓娓道來,。
  引物優(yōu)化設(shè)計
  良好的引物探針設(shè)計是數(shù)字PCR實驗獲得成功的關(guān)鍵因素之一,。這正是眾多研究人員選擇LNA(鎖核酸技術(shù))的原因——LNA修飾的引物和探針采用了成熟可靠的算法設(shè)計,獲得了科學家的信賴,。
  使用不合適的引物可能會引入引物二聚體,、非特異性擴增等,,進而影響實驗結(jié)果的準確性。在此,,小Q建議您在設(shè)計引物時需做以下幾個方面的檢查,,需對設(shè)計好的引物進行BLAST比對分析,以確保引物的特異性,!
  在數(shù)字PCR定量實驗中,,對于基因突變檢測、基因表達差異分析和拷貝數(shù)變異鑒定等對實驗性要求較高的實驗,,需要特異性更高的Assay,。QIAGEN基于QIAcuity數(shù)字PCR平臺開發(fā)并驗證了針對上述常見應(yīng)用的700多組dPCRLNAAssay,所有Assay均經(jīng)過鎖核酸修飾來增強其對互補序列的親和力和特異性,,進而提高實驗結(jié)果的準確性。
  鎖核酸技術(shù)優(yōu)勢
  樣品制備
  值得注意的是,,在gDNA長度≥20kb或進行拷貝數(shù)變異檢測實驗時,,必須對樣品進行酶切處理,確保大片段DNA序列或串聯(lián)序列在酶切處理后,,模板隨機且均勻的進入獨立反應(yīng)體系,,以實現(xiàn)準確和精確的定量。
  建議酶切位點
  數(shù)字PCR實驗離不開包含有Mg2+,、dNTP,、Buffer和DNA聚合酶等PCR反應(yīng)所需要的MasterMix。隨著實驗的不斷深入,,對于實驗條件的要求也不斷提高,,其中DNA聚合酶對實驗的準確性起著至關(guān)重要的作用。由于非熱啟動的DNA聚合酶在反應(yīng)體系易使引物在室溫條件下發(fā)生非特異性擴增,,直接影響實驗結(jié)果,。為確保實驗順利進行,QIAcuityEGPCRKit和ProbePCRKit均采用抗體修飾的熱啟動DNA聚合酶,,利用小分子鎖扣(Guardmolecular)將DNA聚合酶與抗體緊密結(jié)合形成雙保險,,使其室溫條件下失活,只有通過95℃高溫2分鐘才能開啟小分子鎖扣,,激活DNA聚合酶活性,,有效避免了非特異性擴增現(xiàn)象。
  熱啟動DNA聚合酶技術(shù)
  樣品分區(qū)微反應(yīng)單元體積大小一致且穩(wěn)定是泊松分布準確計算的前提,。樣本反應(yīng)液在進行液滴分散過程中由于液體表面張力,、操作不當?shù)扔绊懀瑢?dǎo)致其部分發(fā)生融合和破裂,。融合使液滴體積變大,,破裂則導(dǎo)致有效分區(qū)數(shù)量變少更增加了交叉污染的風險,。因此,整個實驗過程需嚴格按照標準流程進行實驗操作,。相較于液滴式分區(qū),,QIAcuity數(shù)字PCR搭配的Nanoplate采用納米微孔設(shè)計,利用微流體技術(shù)將數(shù)字PCR反應(yīng)體系分配到大小均一且固定微孔中,,并在分區(qū)完成后自動封閉所有微孔聯(lián)通管道,,真正意義上實現(xiàn)獨立均一的微反應(yīng)體系。
  熱循環(huán)過程PCR擴增效率的高低直接影響終信號的判讀和實驗結(jié)果分析,。在進行熱循環(huán)實驗時,,需檢查樣品的密封性以及PCR反應(yīng)板是否和PCR儀熱蓋*接觸,確保PCR過程中樣品反應(yīng)液沒有蒸發(fā),。QIAcuity數(shù)字PCR系統(tǒng)采用獨立的微反應(yīng)腔室封閉方式,,固態(tài)的物理分割和封閉可有效避免PCR過程中微反應(yīng)體系的水分蒸發(fā),確保微反應(yīng)體系中樣本反應(yīng)液濃度的恒定,,更易實現(xiàn)準確和精確的定量,。
  數(shù)據(jù)分析原始數(shù)據(jù)中往往發(fā)現(xiàn)陽性信號與陰性背景之間存在許多弱陽性信號。因此需要對引物探針進行重新設(shè)計和優(yōu)化(詳見引物探針優(yōu)化設(shè)計)或提升退火溫度(探針通常比引物高5~10℃),,以消除疑似熒光信號的“雨區(qū)“現(xiàn)象,;此外,陽性信號和陰性背景間隙過小,,導(dǎo)致終結(jié)果無法準確判讀,。因此需要調(diào)整引物探針濃度(建議總反應(yīng)體系引物濃度為600~800nM;探針濃度為200-400nM)或5'端前三個堿基如有G出現(xiàn),,則將其互補序列設(shè)計為實驗所用探針,,以提高陰陽性信號間隙,便于分析結(jié)果的準確判讀,。
  

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