基因組DNA提取試劑盒簡介

DNA是遺傳信息的載體,，是重要的生物信息分子,，是分子生物學研究的主要對象,，為了進行測序,、雜交,、基因表達,、文庫構建等試驗，獲得高分子量和高純度的基因組DNA是非常重要的前提,，因此基因組DNA的提取也是分子生物學試驗技術中重要,、基本的操作之一。

Solarbio公司提供各種不同樣品基因組DNA提取試劑盒,，如植物,、動物、細菌,、細胞,、血液、酵母等基因組DNA提取試劑盒,。所提取的基因組純度高,，片段大小在50kb左右,。用戶可根據(jù)需要選用不同的試劑盒來進行不同樣品的抽提。

一,、基因組DNA提取的原則

1,、保證核酸一級結構的完整性(因為遺傳信息全部儲存在核酸一級結構中，故完整的一級結構是保證核酸結構與功能研究的基層),。

2,、排除其它分子(如蛋白質(zhì)、多糖,,、脂類,、有機溶劑等)的污染，使下游試驗順利進行,。

二,、基因組DNA提取的原理和方法

DNA與組蛋白構成核小體，核小體纏繞成中空的螺旋管狀結構,，即染色絲,，染色絲再與許多非組蛋白形成染色體。染色體存在于細胞核中,，外有核膜及胞膜,。從組織中提取DNA必須先將組織分散成單個細胞，然后破碎胞膜及核膜,，使染色體釋放出來,，同時去除與DNA結合的組蛋白及非組蛋白。

1,、樣品預處理

從各種不同來源的樣品(如細菌,、酵母、血液,、動植物組織細胞等)中提取高純度的基因組DNA,，因細胞結構及所成分不同，樣品預處理方式也不同,，以下簡單介紹常用提取材料的預處理方式,，若需詳細了解，請參考本公司各基因組DNA提取試劑盒說明書,。

部分樣品預處理方式

植物材料液氮研磨

動物材料勻漿,、液氮研磨

培養(yǎng)細胞蛋白酶K處理

細菌溶菌酶破壁

酵母破壁酶破壁、玻璃珠研磨

血液紅細胞裂解液去紅細胞

2,、細胞裂解

CTAB法：

適用于植物組織,、真菌等。

CTAB是一種陽離子去污劑，可溶解細胞膜,，并與核酸形成復合物,。該復合物在高鹽溶液中(>0.7M NaCl)是可溶的，通過有機溶劑抽提,，去除蛋白,、多糖、多酚等雜質(zhì)后加入乙醇沉淀即可使核酸分離出來,。

SDS法：

適用于細菌,、血液、酵母,、動物組織,、細胞等。

SDS是一種陰離子去污劑,，可溶解細胞膜，裂解細胞,，使蛋白質(zhì)變性,、染色體解析。

其它裂解方法：

物理方式：機械剪切,、超聲波破碎,、研磨勻漿等

化學方式：異硫氰酸胍、堿裂解等

酶法：蛋白酶K

3,、DNA分離純化

純化要求：

核酸樣品中不應存在對酶(如核酸內(nèi)切酶,、DNA聚合酶等)有抑制作用的成分。

其它生物大分子如蛋白質(zhì),、多糖,、多酚和脂類分子等污染應降低到低程度。

排除其它核酸分子的污染,，如提DNA時應去除RNA,，反之亦然。

純化方法：

細胞破碎后,，常使用吸附材料結合方法去除雜質(zhì)和純化DNA,，主要有硅基質(zhì)材料、陰離子交換樹脂和磁珠等,。因硅基質(zhì)材料可特異吸附核酸DNA,，使用方便、快捷,，不需要使用有毒溶劑如酚,、氯fang等，使得提取基因組像過濾一樣簡單，因此硅基質(zhì)材料成為大規(guī)模分離純化DNA的通用方法,。

硅基質(zhì)材料吸附核酸的原理：主要利用DNA在高鹽低pH值環(huán)境下與硅基質(zhì)材料相結合,，在低鹽高pH值環(huán)境下與硅基質(zhì)材料脫離的特征。其機理可能是高濃度鹽離子破壞了硅基質(zhì)水分子結構,，形成陽離子橋,，當鹽被清除后，再水化的硅石破壞了基質(zhì)和DNA之間的吸引力,，因而DNA從硅基質(zhì)上被洗脫下來,。

注意事項：

盡量簡化操作步驟，縮短提取過程,，以減少各種有害因素對核酸的破壞,。

減少化學物質(zhì)對DNA的降解，為避免過酸,、過堿對DNA雙鏈中磷酸二酯鍵的破壞,，操作多在pH值4.0-10.0的條件下進行。

防止基因組DNA的生物降解,，主要是DNase降解基因組DNA,，DNase需二價金屬陽離子如Mg2+等的激活，可用EDTA等金屬離子螯和劑螯和Mg2+以抑制DNase的活性,。

減少物理因素對DNA的降解,，物理降解因素主要包括機械剪切力(如劇烈振蕩、攪拌等),，細胞突然置于低滲液中導致的細胞爆炸式破裂,，DNase大量釋放，樣品反復凍融和高溫等,。

4,、DNA洗脫收集

DNA的洗脫效率取決于以下重要因素：

洗脫液成分：

采用硅基質(zhì)膜吸附的DNA，可將DNA在低鹽高pH值條件下洗脫下來,。pH值在7.0-8.5之間洗脫效率較高,，pH值低于7.0則洗脫效率很低。一般基因組提取試劑盒中的洗脫緩沖液就是TE(pH8.0),，既為DNA從硅基質(zhì)膜上洗脫下來提供良好的pH環(huán)境,，其中的EDTA又能保證DNA不被DNase降解，同時由于EDTA濃度非常低,，對核酸內(nèi)切酶,、DNA聚合酶的影響非常微弱，不影響后續(xù)試驗,，可放心使用,。

洗脫液體積：

當洗脫液體積小于30ul時,，洗脫效率很低且不穩(wěn)定；當洗脫液體積在50-200ul時,，洗脫效率穩(wěn)定在80-90﹪,，并可保證得到大產(chǎn)量，因此洗脫液體積不能小于30ul,。

加洗脫液部位：

100-200ul洗脫液能*覆蓋硅基質(zhì)膜,，DNA的洗脫量可得到保證，但當洗脫液體積較少如30-50ul時,，須在硅基質(zhì)膜中間部分懸空滴加洗脫液,，以確保少量的洗脫液能*覆蓋硅膠膜。

洗脫液的溫度：                                                

在加洗脫液之前,，先將洗脫液在60-75℃水浴中預熱10分鐘,，可有效提高DNA的洗脫效率。

洗脫時間和次數(shù)：

加入預熱的洗脫液后,，可在室溫放置2-5分鐘使DNA*溶解在洗脫液里通過離心而洗脫下來,。同時可進行二次或三次洗脫，即將前次洗脫下來的洗脫液再上柱,、離心,，使前次沒有洗脫下來的DNA再次溶解在洗脫液里，從而提高DNA的產(chǎn)量,。

5,、DNA的定量及檢測

提取得到的DNA片段需從分子質(zhì)量,、濃度,、純度等方面進行檢測，從而判斷DNA質(zhì)量,。

用瓊脂糖凝膠電泳分析DNA分子質(zhì)量：

得到的基因組DNA片段的大小與樣品保存時間,、操作過程中的剪切力等因素有關。Solarbio公司的基因組DNA提取試劑盒提取的不同材料基因組DNA片段大小一般在50kb左右,，能很好地滿足后續(xù)試驗的要求,。

通常用瓊脂糖凝膠電泳分析DNA分子質(zhì)量時，以溴酚藍為示蹤染料,，EB染色,，紫外觀察，并與DNA分子量標準對照即可判斷所提DNA的平均分子量,。高質(zhì)量的基因組DNA應顯示為單一條帶,，如DNA降解則表現(xiàn)為彌散條帶。

用紫外分光光度計檢測DNA濃度和純度：

濃度測定：

DNA在OD260處有顯著吸收峰,，OD260值為1相當于大約50ug/ml雙鏈DNA,。

以下簡單介紹OD260的測定方法：

所提基因組DNA樣品=100ul

進行OD260值測定的待測樣品=20ul所提基因組DNA樣品+180ul TE=200ul

DNA稀釋倍數(shù)=200ul/20ul=10倍

如200ul待測樣品OD260值=0.2

待測樣品濃度(即100ul基因組DNA樣品濃度)=50ug/ml×OD260值×稀釋倍數(shù)=100 ug/ml

所提100ul基因組DNA樣品總量=100 ug/ml×100ul=10ug DNA

純度測定：

一般用OD260/OD280值檢測DNA樣品的純度。正常OD260/OD280值約為1.7-1.9，說明DNA純度較好,；若OD260/OD280值小于1.7,，說明可能有蛋白污染；若OD260/OD280值大于2.0,，說明可能有RNA污染或DNA已經(jīng)降解,。

注：因為pH值和離子會影響光吸收值，因此洗脫時如不使用洗脫緩沖液,，而使用去離子水,，OD260/OD280值會偏低，但并不表示純度低,。

6,、DNA的儲存

儲存溶液：

DNA為兩性解離分子，在堿性條件下較穩(wěn)定,，因此一般用TE(pH8.0)保存,。TE的成分為：10 mM Tris-HCl(Tris與鹽酸形成強的緩沖對)；1 mM EDTA(乙二胺四乙酸,，能螯合二價金屬陽離子,，抑制DNase的活性)；pH8.0(堿性條件可減少DNA的脫氨作用,，防止降解),。ddH2O的正常pH值為7.0，可作為DNA的儲存液,，但有些試驗室制備的ddH2O呈酸性(pH值小于7.0),，這不僅影響DNA的洗脫效率，而且導致長時間保存的DNA容易發(fā)生降解,。因此建議用TE作為DNA的長期儲存液,。

儲存條件：

為避免DNA降解，提取的DNA應*行分裝,，然后置于-20℃或-70℃保存,，同時注意避免反復凍融造成DNA降解。