血液中血清蛋白及其他球蛋白的分離方法
一,、實驗原理
帶電質(zhì)點在電場作用下,，帶正電荷的移向負(fù)極，帶負(fù)電荷的移向正極,，這種現(xiàn)象稱為電泳,。蛋白質(zhì)分子具有許多可解離的酸性基團(tuán)和堿性基團(tuán)，在一定的pH條件下，它會解離而帶電,，在某一pH下,，蛋白質(zhì)分子中所帶的正電荷數(shù)恰好等于負(fù)電荷數(shù)，即分子靜電荷等于零,。此時蛋白質(zhì)分子在電場中不移動,，溶液的這一PH值稱為該蛋白質(zhì)的等電點。
當(dāng)溶液的pH小于該蛋白質(zhì)的等電點,，則蛋白質(zhì)分子會結(jié)合一部分H離子而帶正電荷,，在電場中就會向負(fù)極移，反之,，如果溶液的pH大于該蛋白質(zhì)的等電點,，則蛋白質(zhì)分子會解離出一部分H離子而帶負(fù)電荷，在電場中就會向正極移動,。
由于各蛋白質(zhì)的等電點不同,，在相同的pH溶液中所帶的電荷性質(zhì)不同，電荷的數(shù)目不同,，因而在電場中泳動的方向和速度也不相同,，從而使混合樣品中的蛋白質(zhì)各組分得到分離。
本實驗采用的醋酸纖維薄膜電泳是以醋酸纖維薄膜為支持物,。醋酸纖維薄膜對蛋白質(zhì)樣品吸附極少而無“拖尾”現(xiàn)象,。
本方法快速省時、靈敏度高,、樣品用量少,、操作簡單，目前已廣泛用于分析檢測血漿蛋白,、脂蛋白,、糖蛋白、胎兒甲種球蛋白,、體液、脊髓液,、脫氫酶,、多肽、核酸及其他生物大分子,，為心血管病,，肝硬化及某些癌癥鑒別診斷提供了可靠的依據(jù)，因而已成為醫(yī)學(xué)和臨床檢驗的常規(guī)技術(shù),。
二,、實驗用品
（一）器材
（1）電泳儀和臥式電泳槽。
（2）分光光度計,。
（3）醋酸纖維薄膜,。
（4）培養(yǎng)皿和點樣玻璃片,。
（二）試劑
（1）Barbitalum：Barbiturate sodium緩沖液
（2）染色液：稱取0.5g氯基黑10B，加入蒸餾水40ml,甲醇50ml和冰醋酸10ml混勻,，在具塞試劑瓶內(nèi)貯存,。
（3）透明液：冰醋酸25ml,加 95%乙醇75ml。
（4）漂洗液：乙醇45ml,，冰醋酸5ml,，蒸餾水50ml。
（6）定量洗脫液：0.4mol/L NaOH溶液,。
（三）材料
新鮮血清（無溶血現(xiàn)象）,。
三、實驗程序
（一）操作方法
1.儀器和薄膜的準(zhǔn)備
（1）酸酸纖維薄膜的剪裁和準(zhǔn)備：醋酸纖維膜分成有光澤和元光澤面兩面,，選擇無光澤一面,，距離邊沿1.5cm處劃一條直線，然后把薄膜剪成2×8cm,將裁好的薄膜無光澤面朝下,，漂浮巴比妥緩沖液上,，若漂浮的薄膜在15~30S內(nèi)迅速潤濕，整條薄膜色澤深淺一致,，可以用于電泳,。讓膜自然下沉，待膜*浸透約0.5h后取出,，夾在清潔的濾紙中間輕輕吸去多余的緩沖液,，同時分辨光澤面和無光澤面。
（2）制作濾紙橋：剪裁尺寸合適的濾紙條,，取雙層附著在電泳槽的支架上,。使它的一端與支架前沿對齊，另一端浸入電極槽的緩沖液內(nèi),，然后用緩沖液將濾紙全部潤濕并驅(qū)除氣泡,，使濾紙緊貼在支架上，即為“濾紙橋”,。按照同樣的方法,，在另一個電極槽的支架制作相同的濾紙橋。它們作用是聯(lián)系醋酸纖維薄膜和兩極緩沖液之間的橋梁,。
（3）平衡：用平衡裝置,，使兩個電極槽內(nèi)緩沖液的液面彼此處于水平狀態(tài)，一般需要平衡15~20min,。
2.點樣
在薄膜無光澤的一面點樣,。點樣在距負(fù)1.5cm處。點樣時，用玻璃片沾上血清,，先在濾紙上練習(xí)點樣,，使血清均勻分布在點樣區(qū)，形成具有一定寬度,，粗細(xì)勻稱的直線,，試點熟練之后，開始點在醋酸纖維薄膜上,。
3. 電泳
用鑷子將目點樣端的薄膜平貼在電泳槽負(fù)極支架的濾紙橋上,，另一端平貼于正極，薄膜要緊貼濾紙橋并繃直,，中間不能下垂,。
4. 染色
電泳完畢立即取出薄膜，直接浸入染色液中染色5min,，取出后用漂洗液浸洗脫色,，每隔10min左右換一次漂洗液，連續(xù)更換3次,，可使背景顏色脫去,，將膜夾于干凈的濾紙中，用電吹風(fēng)的冷風(fēng)將膜吹干,。操作中,，要注意控制染色和漂洗的時間，防止背景過深或某些區(qū)帶太淺,。
5. 結(jié)果判斷
一般在染色后的薄膜上可顯現(xiàn)清楚的五條區(qū)帶,。從正起，依次為清蛋白,，a1球蛋白,，，a2球蛋白,，β球蛋白和r球蛋白,。
6. 透明
取一條漂洗清楚的電泳薄膜，待干燥后浸入透明液中約5min,取出平貼于玻璃板上,，使*干燥,，即成透明膜，電泳圖譜仍清晰可見,，可以長期保存。
7. 定量洗脫法
用洗脫法測定各蛋白質(zhì)組分的相對百分含量,。將電泳圖譜的各區(qū)帶剪下,，分別浸于盛有0.4mol/L NaOH溶液的試管中，清蛋白管加入4ml氫氧化鈉溶液，其余每管加2ml氫氧化鈉溶液,，揺勻,，放入37℃恒溫水浴中浸提30min，每隔10min充分搖動一次,，以便將色澤*洗脫下來,。該溶液顏色較穩(wěn)定，在室溫下24h內(nèi)顏色強(qiáng)度無顯著變化,，然后在620nm波長處比色,，測定各管的光吸收值。分別計算血清各部分蛋白質(zhì)所占百分率,。
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