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D-Luciferin 是熒光素酶 (Luc) 的天然底物 | MedChemExpress (MCE)

閱讀:80      發(fā)布時間:2025-2-19
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MCE 的所有產(chǎn)品僅用作科學研究或藥證申報,我們不為任何個人用途提供產(chǎn)品和服務,。

D-熒光素鉀鹽

MCE 國際站:D-Luciferin potassium

品牌:MedChemExpress (MCE)

貨號:HY-12591B

CAS:115144-35-9

中文名稱:D-螢光素鉀鹽

Synonyms:D-熒光素鉀鹽; D-(--Luciferin potassium; Firefly luciferin potassium; Beetle Luciferin potassium

純度:99.97%

存儲條件:4°C,,密封保存,避光防潮 *溶劑中:-80°C,,2年,;-20°C,1年(密封保存,,避光防潮)

運輸條件:美國大陸的室溫,;其他地方可能有所不同。

產(chǎn)品活性:D-Luciferin 是熒光素酶 (Luc) 的天然底物,,對螢火蟲產(chǎn)生典型的黃綠光進行催化,。該反應產(chǎn)生的 560 nm 化學發(fā)光在幾秒鐘內(nèi)達到峰值,當?shù)孜餆晒馑剡^量時,,光輸出與熒光素酶濃度成正比,。熒光素酶 (luc) 基因是研究和活性分子篩選的常用報告基因?;瘜W發(fā)光技術實際上是無背景的,,使得 luc 報告基因成為檢測低水平基因表達的理想選擇。在標準熒光計數(shù)儀中可以可靠地測量到 0.02 pg 的熒光素酶,。除了用于基因表達的外,,熒光素酶還用于 ATP 的檢測。MCE提供螢火蟲熒光素酶 (HY-P1004) ,、熒光素游離酸 (HY-12591A) 及其水溶性鈉鹽 (HY-12591) 和鉀鹽 (HY-12591B) ,。

生物活性:D-熒光素 (D-(-)-Luciferin) potassium 是熒光素酶的底物,可催化生物發(fā)光昆蟲產(chǎn)生光[1],。 體外 D-熒光素是熒光素酶 (Luc) 的天然底物,,可催化螢火蟲典型黃綠光的產(chǎn)生。本綜述涵蓋了合成D-螢光素及其衍生物或類似物,,它們是來自美國螢火蟲 Photinus pyralis 的螢光素酶的底物或抑制劑,,這種酶更常用于體外和光學成像技術[1]< /sup>.
D-螢光素在 PC3M-Luc 細胞裂解物中顯示出測量的 Km 降低,Km 為 34 μM[ 2],。 體內(nèi):生物發(fā)光成像 (BLI) 使用螢火蟲熒光素酶 (Fluc) 作為報告基因,,D-熒光素作為底物,是目前應用廣泛的技術,。將總信號強度與 D-熒光素注射后的時間作圖,,以生成時間-強度曲線。除了峰值信號外,,D-熒光素注射后固定時間點(5,、10、15 和 20 分鐘)的信號被確定為峰值信號的替代信號,。給定時間-強度曲線中的信號針對曲線中的峰值信號進行歸一化,,以表示 D-熒光素注射后的時間變化模式[3]
注入 10 μL每克體重的 D-螢光素(腹膜內(nèi)或靜脈內(nèi))儲備液:標準 150 mg/kg 注射的 20 g 小鼠通常約 200 μL,。
解凍 D-螢光素(鉀鹽或鈉鹽)室溫并溶解在 dPBS(不含鈣或鎂)中,,最終濃度為 15 mg/mL。通過 5-10 mL 的無菌 H2O 預濕 0.22 μm 過濾器并丟棄水,。通過準備好的 0.22 μm 注射器過濾器對 D-熒光素溶液進行消毒,。

體外:1. 操作前注意事項a) D-Luciferin 在 100 mM 的水性緩沖液 (pH 6.1-6.5) 中易于溶解。儲備溶液可在不含 ATP 的水中制成,,并儲存在 -20℃ 的溫度下,,以防光線照射。游離酸必須用適當?shù)膲A中和以溶解,。在較高的 pH 值下,,熒光素經(jīng)歷堿催化的脫氫脲醛生成,以及外消旋成L-異構(gòu)體,。b) D-Luciferin 可用于任何現(xiàn)有的報告基因檢測或 ATP 檢測系統(tǒng),。c) 如果檢測 ATP,需要戴手套和使用不含 ATP 的容器,,盡量減少所有可能的 ATP 污染源,。只使用無菌的不含 ATP 的水和試劑,。所有試劑制劑使用蒸壓水。2. 實驗操作此說明僅提供實驗參考,,具體實驗方法根據(jù)您的具體實驗進行更改,。2.1 體外成像實驗示例a) 在無菌水中制備100 mM (100-200X) 熒光素儲備溶液 拌勻。立即使用或一次性等份使用,,并在 -20℃ 下儲存,,避免凍融循環(huán),避免暴露在陽光下,。b) 在預熱過的組織培養(yǎng)液中配制 0.5-1 mM D-Luciferin 工作液c) 除去細胞中的培養(yǎng)基,。d) 在細胞中加入 D-Luciferin 工作液,成像前 37℃ 孵育細胞 5-10 分鐘,。2.2 體內(nèi)成像實驗示例a) 在 DPBS 中制備 15 mg/mL 熒光素儲備溶液,,不含 Mg2+ 和 Ca2+ 拌勻。b) 過濾器通過 0.2μm 過濾器對溶液進行滅菌,。立即使用,,或一次性等份使用,并在 -20℃ 下儲存,,避免凍融循環(huán),,避免暴露在陽光下。c) 成像前 的10-15 分鐘,,以 150 mg/kg (或 10 μL/g 熒光素儲備溶液) 的動物體重腹腔注射 D-Luciferin,。注:應為每個動物模型進行 D-Luciferin 動力學研究,以確定峰值信號時間,。2.3 基因檢測實驗示例a) 在無菌水中制備100 mM 熒光素儲備溶液,。立即使用,或一次性等份使用,,并在 -20℃ 下儲存,,避免凍融循環(huán),避免暴露在陽光下,。b) 在 25 mM tricine 緩沖液 (pH 7.8) 中制備含有 3 mM ATP,、1 mM DTT 和 15 mM MgSO4 的 1 mM D-Luciferin 工作溶液。c) 用移液管將 5-10 μL 細胞裂解液移到微孔板中,。使用不含裂解物的裂解試劑或緩沖液作為空白對照,。d) 根據(jù)說明,使用熒光素工作溶液為光度計注入底部,。e) 立即注入 200 μL D-Luciferin工作溶液,,結(jié)合時間為10秒。 MCE尚未獨立證實這些方法的準確性,。僅供參考,。

體內(nèi):生物發(fā)光成像 (BLI) 使用螢火蟲熒光素酶 (Fluc) 作為報告基因,,D-熒光素作為底物,是目前應用廣泛的技術,。將總信號強度與注射 D-熒光素后的時間作圖,,以生成時間-強度曲線。除了峰值信號之外,,注射 D-熒光素后固定時間點 (5、10,、15 和 20 分鐘) 的信號也被確定為峰值信號的替代,。給定時間-強度曲線中的信號根據(jù)曲線中的峰值信號進行歸一化,以表示注射 D-熒光素后的時間變化模式[3],。每克體重注射 10 μL D-熒光素 (腹膜內(nèi)或靜脈內(nèi)) 原液:標準 150 mg/kg 注射液,,20 克小鼠通常注射約 200 μL。在室溫下解凍 D-熒光素(鉀鹽或鈉鹽),,并溶解在 dPBS(不含鈣或鎂)中,,最終濃度為 15 mg/mL。通過 5-10 mL 無菌 H2O 預濕 0.22 μm 過濾器并棄水,。通過準備好的 0.22 μm 注射器過濾器對 D-熒光素溶液進行滅菌,。MCE 尚未獨立確認這些方法的準確性。它們僅供參考,。

動物實驗:小鼠[2] 在接種 HCT116-Luc 細胞后 3,、5、7,、10,、12、14,、19,、21、24 和 28 天,,使用冷卻電荷耦合器件攝像系統(tǒng) (IVIS 成像系統(tǒng) 100) 進行體內(nèi) BLI,。小鼠皮下注射 100 μL 磷酸鹽緩沖鹽水中的 75 mg/kg D-熒光素。注射后 5 分鐘開始,,以每分鐘一張的速度連續(xù)獲取曝光時間為 1 秒的背部發(fā)光圖像,,直至注射 D-熒光素后 20 分鐘。由于光發(fā)射的時間過程延長,,數(shù)據(jù)采集持續(xù)到第 3 天或第 5 天的注射后 40 分鐘以及第 7 天的 25 分鐘,。Binning 為 4,視野為 15 厘米,。MCE 尚未獨立證實這些方法的準確性,。它們僅供參考,。

熱銷產(chǎn)品:Saikosaponin C  | Vistusertib  |   |   | 

Trending products:Recombinant Proteins  |  Bioactive Screening Libraries  |  Natural Products  |  Fluorescent Dye  |  PROTAC  |  Isotope-Labeled Compounds  |  Oligonucleotides

參考文獻:

[1]. Giuseppe Meroni, et al. D-Luciferin, derivatives and analogues: synthesis and in vitro/in vivo luciferase-catalyzed bioluminescent activity. ARKIVOC 2009 (i) 265-288.
[2]. Inoue Y, et al. Timing of imaging after d-luciferin injection affects the longitudinal assessment of tumor growthusing in vivo bioluminescence imaging. Int J Biomed Imaging. 2010;2010:471408.
[3]. Rajesh Shinde, et al. Luciferin derivatives for enhanced in vitro and in vivo bioluminescence assays. Biochemistry. 2006 Sep 19;45(37):11103-12.

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