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貨物所在地:北京北京市
更新時間:2024-12-03 14:15:51
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產(chǎn)品貨號:D0204P
儲存條件:-20℃
產(chǎn)品組分
組分/規(guī)格 | 10T | 25T | 50T |
DNA Assembly Mix PLUS | 50μl | 125μl | 250μl |
pUC19 Control Plasmid, Linearized (Ampr, 40 ng/μl) | 5μl | 5μl | 5μl |
500 bp Control Fragment (20 ng/μl) | 5μl | 5μl | 5μl |
產(chǎn)品簡介
基于重組原理的無縫克隆技術(shù),作為新一代的克隆方法,,不依賴繁瑣的酶切,、連接步驟,,也不需要末端補平等操作,依據(jù)DNA片段與線性化載體末端的15~25nt同源序列的重組,,可將插入片段克隆至任意線性載體的任意位點,,載體自連背景極低,,是一種簡單、快速,、高效的DNA定向克隆技術(shù)。
DNA Assembly MixPLUS無縫克隆試劑盒最快僅需5分鐘即可完成單片段重組,,且陽性率高于95%。Mix中添加的輔助因子,,有效提高克隆陽性率;經(jīng)優(yōu)化的反應(yīng)體系,,能夠一定程度上耐受未純化PCR產(chǎn)物中含有的雜質(zhì)。升級版的無縫克隆試劑盒具有更高的陽性率,、更好的兼容性。
使用簡單 —— 兼容PCR與酶切體系,,省去繁瑣的純化步驟
超高效率 —— 可以穩(wěn)定支持5-6片段在同一克隆體系
穩(wěn)定可靠 —— 37℃放置一周或凍融30次,,無明顯下降
實驗步驟
1,、實驗流程概要
2,、線性化克隆載體制備
選擇合適的克隆位點,對載體進(jìn)行線性化,,載體的線性化可以通過酶切或反向 PCR 擴(kuò)增完成。
① 酶切制備
推薦使用LabFD™快速內(nèi)切酶進(jìn)行雙酶切,使載體線性化wan 全,,以降低轉(zhuǎn)化背景(假陽性克隆),;若使用單酶切進(jìn)行線性化,,可以適當(dāng)延長酶切時間以減少環(huán)狀質(zhì)粒殘留。
注1:經(jīng)雙酶切進(jìn)行線性化的載體無需去磷酸化,,經(jīng)單酶切則需要去磷酸化,;
注2:酶切完成后,應(yīng)將快速內(nèi)切酶失活或?qū)δ康漠a(chǎn)物純化后再用于重組反應(yīng),。
② 反向 PCR 擴(kuò)增制備
為減少擴(kuò)增突變的引入,,推薦使用高保真PCR Mix進(jìn)行擴(kuò)增。推薦使用預(yù)線性化質(zhì)粒作為模板,,以減少環(huán)狀質(zhì)粒模板殘留對克隆陽性率的影響,。
3、插入片段PCR引物設(shè)計
PCR引物的5' 端必須包含與其相鄰片段(插入片段或載體)末端同源的15~25 nt(推薦18nt)序列,。假如載體為粘性末端,,且3'端突出,則引物設(shè)計必須包含突出部分,;若5'端突出,則引物設(shè)計可以包含突出部分,也可以不包含,。
插入片段正向擴(kuò)增引物:
5'—上游載體末端同源序列+酶切位點(可選)+ 基因特異性正向擴(kuò)增序列— 3'
插入片段反向擴(kuò)增引物:
3'—基因特異性反向擴(kuò)增序列+酶切位點(可選)+下游載體末端同源序列—5'
注1:盡量選擇無重復(fù)序列且GC含量均勻的區(qū)域進(jìn)行克隆,,當(dāng)載體克隆位點上下游25 nt區(qū)域內(nèi)GC含量為40%~60%時,,重組效率zui高,;
注2:本試劑盒所提供的 pUC 19 載體(Ampr)連接端序列如下:
4,、插入片段的 PCR 擴(kuò)增
推薦使用高保真PCR Mix進(jìn)行擴(kuò)增,,以減少擴(kuò)增突變的引入。建議使用純化后的PCR產(chǎn)物進(jìn)行無縫克隆反應(yīng),,若PCR產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳鑒定為特異性擴(kuò)增產(chǎn)物,,可直接使用,,但加樣體積不應(yīng)超過總反應(yīng)體積的20%,。
5、重組反應(yīng)
①于冰水浴中配置以下反應(yīng)體系:
組分 | 反應(yīng)體系 | 陰性對照 | 陽性對照(如有必要) |
DNA Assembly Mix | 5μl | 5μl | 5μl |
線性化載體(ng) | 50~200ng | 50~100ng | pUC19 Control Plasmid,Linearized, 1 μl |
插入片段 | 10~200 ng | - | 500 bp Control, Fragment, 1 μl |
ddH2O | To 10 μl |
a.最適載體用量(ng)=0.02×載體堿基對數(shù),即0.03pmol,。
b.插入單片段,,最適片段用量(ng)= 0.04×片段堿基對數(shù);
插入多片段,,每片段zui適用量(ng)= 0.02×片段堿基對數(shù),。
注1:若插入單片段的長度大于載體,則應(yīng)互換載體與插入片段用量,;
注2:若插入片段的長度小于200 bp,,則插入片段應(yīng)使用5倍載體用量;
注3:若按上述公式計算得到的用量超過zui低/zui高值,,則建議直接按zui低/最高用量使用,;
注4:載體片段過長,、插入片段過長克隆陽性率均會降低。
重組反應(yīng)體系配制完成后,,用移液槍輕輕吸打混勻各組分,,避免產(chǎn)生氣泡,切勿渦旋,。
② 將反應(yīng)體系置于50℃,,反應(yīng)5~60min。
注1:推薦使用 PCR 儀等溫控比較精準(zhǔn)的儀器進(jìn)行反應(yīng),,反應(yīng)時間不足或太長克隆效率均會降低,;
注2:插入1-2個片段時,推薦反應(yīng)時間5-15min,,插入3-5個片段時,,推薦反應(yīng)時間15-30min;
注3:當(dāng)載體骨架在 10 kb 以上或插入片段在4 kb以上時,,建議延長反應(yīng)時間到30-60min
注4:50℃反應(yīng)完成后,,建議進(jìn)行瞬時離心,將反應(yīng)液收集至管底,。
③ 將反應(yīng)液離心管置于冰上冷卻,,之后進(jìn)行轉(zhuǎn)化或者儲存于-20℃。
注1:-20℃儲存的重組產(chǎn)物,,建議在1周內(nèi)使用,。
6、重組產(chǎn)物轉(zhuǎn)化
取5~10μl反應(yīng)液,,加入到100 μl感受態(tài)細(xì)胞中緩慢吸打混勻,,冰上放置30min。42℃熱激45~60sec,,冰浴5 min,。加500 μl SOC或LB培養(yǎng)基,37℃振蕩培養(yǎng)40~60min(200 rpm),。將菌液均勻涂布在含有對應(yīng)抗生素的平板上,,倒置于37℃過夜培養(yǎng)。
注1:不同感受態(tài)細(xì)胞最后的克隆陽性率會有所差別,,推薦使用轉(zhuǎn)化效率>108 CFU/μg的感受態(tài)細(xì)胞,;
注2:菌落數(shù)取決于PCR產(chǎn)物與線性化載體的數(shù)量和純度;
注3:陽性對照平板通常生長大量白色單菌落,陰性對照平板只生長很少的菌落,。
7,、陽性克隆檢測
挑取單菌落至10 μl ddH2O中混勻,95℃裂解10 min 后,,取1 μl裂解液作為模板,,進(jìn)行菌落PCR鑒定,或?qū)尉浣臃N至抗性培養(yǎng)基中培養(yǎng)過夜后,,提取質(zhì)粒進(jìn)行酶切鑒定,。
注1:菌落 PCR 時建議至少使用一條通用引物,避免假陽性結(jié)果,;
注2:必要時可進(jìn)一步對陽性結(jié)果進(jìn)行測序鑒定,。
常見問題
問題描述 | 原因 | 解決方法 |
轉(zhuǎn)化效率低 | 感受態(tài)效率低下 | 使用新制備或妥善保存的感受態(tài)細(xì)胞,。 |
DNA片段比例不佳 | 按照說明書推薦的zui適用量和比例配制反應(yīng)體系,。載體和插入片段的濃度測定: 若線性化載體與插入片段已經(jīng)過純化,且經(jīng)電泳檢測條帶單一或無Smear殘留時,,可使用超微量核酸蛋白檢測儀等基于分光光度法的儀器進(jìn)行濃度測定,,但只有當(dāng)A260/A280 在1.8~2.0之間時濃度值可信;若線性化載體與插入片段未經(jīng)過純化,,也可使用瓊脂糖電泳測定樣品濃度,。 | |
DNA片段純度不夠 | 對載體和插入片段進(jìn)行膠回收純化。由于EDTA等金屬離子螯合劑會抑制無縫克隆反應(yīng),,因此純化產(chǎn)物應(yīng)溶解于ddH2O中,,切勿使用Tris-EDTA等緩沖液。 | |
反應(yīng)產(chǎn)物過量 | 在轉(zhuǎn)化體系中,,無縫克隆反應(yīng)產(chǎn)物體積不應(yīng)超過感受態(tài)細(xì)胞體積的10%,。 | |
大量克隆不含插入片段 | 載體線性化不wan全 | 酶切制備線性化載體時,提高快速內(nèi)切酶的使用量,,延長反應(yīng)時間,,使用膠回收純化酶切產(chǎn)物。 |
相同抗性質(zhì)粒污染 | 以質(zhì)粒為模板進(jìn)行插入片段 PCR 擴(kuò)增時,,使用預(yù)線性化質(zhì)粒作為擴(kuò)增模板,,使用DpnI 等甲基化敏感型內(nèi)切酶對擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行處理,或?qū)Ξa(chǎn)物進(jìn)行膠回收純化,。 | |
平板抗性不足 | 確保使用正確的抗生素,,并使用新鮮制備的抗生素平板。 | |
大量克隆含有 不正確插入片段 | 非特異性PCR擴(kuò)增產(chǎn)物 | 優(yōu)PCR體系,,提高擴(kuò)增特異性,,或膠回收純化PCR產(chǎn)物重疊序列的擴(kuò)增引物。 |
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