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PstI 快速內(nèi)切酶

產(chǎn)品貨號：F5561S

儲存條件：-20℃                                                    

產(chǎn)品組成

產(chǎn)品簡介

LabFD™快速內(nèi)切酶是一系列經(jīng)過基因工程重組、能夠在5~15 分鐘內(nèi)精確完成 DNA 切割的高保真限制性內(nèi)切酶,，適用于質(zhì)粒 DNA,、PCR 產(chǎn)物或基因組 DNA 等的快速酶切。LabFD™ 快速內(nèi)切酶具有如下特點：5~15 分鐘內(nèi)即可完成酶切,；共用一種酶切Buffer,，大大簡化酶切反應體系,；良好的酶活冗余度，輕松應對底物過量或困難模板酶切,。此外,，LABLEAD去磷酸化、連接試劑在LabFD™酶切Buffer 中具有100%活性,，支持一管化反應,，提升“酶切-修飾-連接"的體驗。

建議的反應條件：

1× LabFD™緩沖液,；

37℃溫育,；

參照“DNA快速酶切流程"配制反應體系。

失活條件

不可熱失活,，請使用酚氯仿抽提或柱純化,。

質(zhì)量控制

功能活性檢測

最適反應溫度下，在20ul反應體系中,，1ul LabFD™ PstI能夠在15min 內(nèi)wanquan消化1ug λDNA,。

超長時間溫育檢測

最適反應溫度下，將1ul LabFD™ PstI 與 1ugλDNA共同溫育3h,，未檢測到其他核酸酶污染或星號活性引起的底物非特異性降解,，延時酶切可能出現(xiàn)星號活性。

酶切-連接-再酶切檢測

最適反應溫度下,，使用 1ul LabFD™ PstI消化底物,，回收酶切產(chǎn)物。在22℃下使用適量Fast T4 DNA Ligase可以將酶切產(chǎn)物重新連接,。將連接產(chǎn)物再次回收后,，使用相同的內(nèi)切酶可以重新切開連接產(chǎn)物。

將含有單一lacZα基因的載體以1ul LabFD™ PstI消化,，重新連接后轉(zhuǎn)化入大腸桿菌感受態(tài)細胞,，涂布在含有對應抗生素、IPTG和X-gal的LB培養(yǎng)基平板上,。連接正確的產(chǎn)物會生長出藍色菌落,，而連接錯誤（即DNA末端切口不完整）的產(chǎn)物將得到白色菌落。對于LabFD™系列限制酶而言,，白色菌落比例應小于1%,。

使用方法

1.DNA快速酶切流程

1）在冰上按如下建議的加樣順序配制反應體系：

注：本體系適用于經(jīng)過純化的PCR產(chǎn)物酶切，未純化的PCR具備一定的離子強度,，10xLabFD^TMbuffer加入量可適當減少至2ul,。但由于DNA聚合酶同時具有外切酶活性，會影響酶切產(chǎn)物,，因此如下一步需進行克隆等操作,，建議酶切前對PCR產(chǎn)物進行純化,。

2）輕柔吸打或輕彈管壁以混勻（切勿渦旋），然后瞬時離心以收集掛壁液滴,；

3）37℃溫育15 min（質(zhì)粒）,，或15~30 min（PCR 產(chǎn)物），或30~60min（基因組DNA）,；

4）酚氯仿抽提或柱純化,。

2.雙酶切或多酶切

1）每種快速內(nèi)切酶的用量為1ul，并根據(jù)需要適當擴大反應體系,；

2）所有快速內(nèi)切酶的體積總和不得超過總反應體系的1/10,；

3）如果所用的幾種快速內(nèi)切酶的最適反應溫度不同，應先以最適溫度低的酶開始酶切,，再添加最適溫度較高的酶,，在其最適反應溫度下進行酶切反應。

3.適用于質(zhì)粒的擴大反應體系

注：如果總反應體系大于20ul,，應適當增加溫育時間,，盡量使用水浴、金屬浴或沙浴,。

不同 DNA 中的酶切位點數(shù)量

甲基化修飾影響

在不同反應緩沖液中的活性

注：活性數(shù)據(jù)來自LABLEAD限制酶標準反應體系下的檢測