【產品名稱】
商品名稱：禽偏肺病毒（aMPV）核酸檢測試劑盒(熒光 PCR 法)
Name：Avian Metapneumovirus Detection Kit (Real-Time PCR Method)
【包裝規(guī)格】50T/盒
【預期用途】
禽偏肺病毒（Avian Metapneumovirus, aMPV）主要引起火雞和雞的上呼吸道或中樞神經系統(tǒng)疾病,，如火雞鼻氣管炎（TRT）和肉雞腫頭綜合征（SES）,。目前 aMPV 有 4 個亞型，其中 A,、B 亞型在世界各地均有報道,，C亞型和 D 亞型分別在美國和法國報道。
本試劑盒適用于檢測肺臟,、氣管和鼻竇組織以及呼吸道,、眼鼻分泌物等標本中禽偏肺病毒核酸，適用于禽偏肺病毒感染的輔助診斷,。
【檢驗原理】
本試劑盒根據禽偏肺病毒基因保守區(qū)設計特異性引物和熒光探針,，用一步法熒光 RT-PCR 技術對禽偏肺病毒核酸進行體外擴增檢測，用于臨床上對可疑感染病料的病原學診斷,。
【試劑組成】
包裝規(guī)格50T/盒
aMPV 反應液500μL×2 管
酶液50μL×1 管
aMPV 陽性質控品50μL ×1 管
陰性質控品250μL ×1 管
說明：不同批號的試劑盒組分不可交互使用
【儲存條件及有效期】
-20℃±5℃,，避光保存,、運輸、反復凍融次數不超過 5 次,，有效期 12 個月,。
【適用儀器】
ABI7500、安捷倫 MX3000P/3005P,、LightCycler,、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀,。
【標本采集】
病死或撲殺禽,，取肺臟、氣管或鼻竇組織,；待檢活禽,，用棉拭子取眼鼻或呼吸道分泌物，放于 1mL 50%甘油生理鹽水中,。
【保存和運輸】
采集或處理好的樣品在 2℃~8℃條件下保存應不超過 24 h,；若需長期保存，應放置-70℃以下保存,，凍融不超過 3 次,。
【使用方法】
1.樣品處理（樣本處理區(qū)）
1.1樣本前處理
組織樣品：稱取約 1g，手術剪剪碎混勻后于研磨器中研磨,，加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨,，待勻漿后轉至 1.5mL 滅菌離心管中，8000rpm 離心 2min,，取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中,；棉拭子直接取 100μL 于1.5mL 滅菌離心管中。
1.2核酸提取
推薦采用優(yōu)利科（上海）生命科學有限公司生產的核酸提取或純化試劑（磁珠法或離心柱法）進行核酸提取,，請 按照試劑說明書進行操作,。
2.試劑配制（試劑準備區(qū)）
根據待檢測樣本總數，設所需要的 PCR 反應管管數為 N(N=樣本數+1 管陰性對照+1 管陽性對照,；反應管數每滿 10 份,，多配制 1 份)，每測試反應體系配制如下表：
試劑aMPV 反應液酶液
用量19μL1μL
將混合好的測試反應液分裝到 PCR 反應管中,，20μL/管,。
3.加樣（樣本處理區(qū)）
將步驟 1 提取的核酸、陽性質控品,、陰性質控品各取 5μL,，分別加入相應的反應管中，蓋好管蓋,，混勻,， 短暫離心,。
4.PCR 擴增（核酸擴增區(qū)）
4.1將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內,；
4.2設置好通道,、樣品信息，反應體系設置為 25μL,；
熒光通道選擇：檢測通道（ReporterDye）FAM,，淬滅通道（QuencherDye）NONE，ABI 系列儀器請勿選擇 ROX
參比熒光,，選擇 None 即可,。
4.3推薦循環(huán)參數設置：
步驟循環(huán)數溫度時間收集熒光信號
11 cycle50℃10min否
21 cycle95℃2min否
345 cycles95℃15sec否
60℃30sec是
5.結果分析判定
5.1結果分析條件設定（請參照各儀器使用說明書進行設置，以分析 ABI7500 儀器為例）
反應結束后自動保存結果,，根據分析后圖像調節(jié) Baseline 的 Start 值,、End 值以及 Threshold 值（用戶可根據實際情況自行調整，Start 值可設在 3～15,、End 值可設在 5～20,，使閾值線位于擴增曲線指數期，陰性質控品的擴增曲線平直或低于閾值線）,，點擊 Analyze 自動獲得分析結果,。
5.2結果判斷
陽性：檢測通道 Ct 值≤40，且曲線有明顯的指數增長曲線,； 陰性：樣本檢測結果 Ct 值>40 或無 Ct 值,。
5.3質控標準
陰性質控品：無特異性擴增曲線或無 Ct 值顯示；
陽性質控品：擴增曲線有明顯指數增長期,，且 Ct 值≤32,； 以上條件應同時滿足，否則實驗視為無效,。
6.檢測方法的局限性
1.樣本檢測結果與樣本收集,、處理、運送以及保存質量有關,；
2.樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,，會出現假陽性結果；
3.陽性對照,、擴增產物泄漏,，會導致假陽性結果；
4.病原體在流行過程中基因突變,、重組,，會導致假陰性結果；
5.不同的提取方法存在提取效率差異,，會導致假陰性結果,；
6.試劑運輸,，保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降，出現假陰性或定量檢測不準確的結果,；
7.本檢測結果僅供參考,，如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。
【注意事項】
1.所有操作嚴格按照說明書進行,；
2.試劑盒內各種組分使用前應自然融化,，wan全混勻并短暫離心；
3.反應液應避光保存,；
4.反應中盡量避免氣泡存在,，管蓋需蓋緊；
5.使用一次性吸頭,、一次性手套和各區(qū)專用工作服,；
6.樣本處理、試劑配制,、加樣需在不同區(qū)進行,，以免交叉污染；
7.實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器,；
8.試劑盒里所有物品應視為污染物對待,，并按照《微生物生物醫(yī)學實驗室生物安全通則》進行處理。
【參考文獻】
[1]王艷,莊金秋,梅建國,等.禽偏肺病毒檢測方法研究進展[J].動物醫(yī)學進展,2015.
[2]陳琳,刁有祥,鄒金峰.禽偏肺病毒 RT-PCR 檢測方法的建立及應用[J].中國獸醫(yī)學報,2012.
[3]Manual O I E T. Chapter 3. 3. 15. Foot and mouth disease (infection with foot and mouth disease virus). Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals 2018[J].
4
立即詢價
您提交后,，專屬客服將第一時間為您服務