禽腺病毒(FADV)核酸檢測試劑盒（熒光 PCR 法）
通用名稱：禽腺病毒(FADV)核酸檢測試劑盒(熒光 PCR 法)
Name ：Fowl Adenovirus Detection Kit (Real-Time PCR Method)
【包裝規(guī)格】25T/盒、50T/盒
【預期用途】
禽腺病毒(Fowl Adenovirus, FADV)是無囊膜,、線性雙股 DNA 病毒,屬于腺病毒科,、禽腺病毒屬成員。該病毒可感染雞,、火雞及其他禽類,。FADV 可致雞發(fā)生包涵體肝炎、心包積水綜合征和肌胃糜爛等疾病,。該病常與禽類其他病原混合感染,感染雞只可繼發(fā)再生障礙性貧血,、肝炎及產蛋量下降等。FADV 呈世界性分布,病毒可經糞-口途徑水平傳播,也可垂直傳播,給養(yǎng)禽業(yè)造成巨大經濟損失,。
本試劑盒適用于檢測呼吸道分泌物棉拭子（感染 I 群禽腺病毒的雞,、火雞、鵝,、鵪鶉）,、卵巢、輸卵管,、卵泡,、子宮和輸卵管粘膜組織、泄殖腔拭子（感染 II,、III 群禽腺病毒的雞,、鴨）等樣本中的禽腺病毒，用于禽腺病毒感染的輔助診斷。
【檢驗原理】
本試劑盒采用 TaqMan 探針法實時熒光 PCR 技術,，設計一對禽腺病毒特異性引物,，結合一條特異性探針[1]， 用熒光 PCR 技術對禽腺病毒的核酸進行體外擴增檢測,，用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷,。
【試劑組成】
包裝規(guī)格25T/盒50T/盒
FADV 反應液500μL×1 管500μL×2 管
酶液25μL×1 管50μL×1 管
FADV 陽性質控品50μL ×1 管50μL ×1 管
陰性質控品250μL ×1 管250μL ×1 管
說明：不同批號的試劑盒組分不可交互使用。
【儲存條件及有效期】
-20℃±5℃,，避光保存,、運輸、反復凍融次數(shù)不超過 5 次,，有效期 12 個月,。
【適用儀器】
ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P,、LightCycler,、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀,。
【標本采集】
病死禽取卵巢,、輸卵管、卵泡,、子宮和輸卵管粘膜組織,；活雞取呼吸道拭子或泄殖腔拭子，放于 1mL 50%
甘油生理鹽水中
【保存和運輸】
上述標本短期內可保存于-20℃,，長期保存可置-70℃,，但不能超過 6 個月，標本運送應采用 2~8℃冰袋運輸,，嚴禁反復凍融,。
【使用方法】
1.樣品處理（樣本處理區(qū)）
1.1樣本前處理
組織樣品：稱取樣品約 1g，手術剪剪碎混勻后,，于研磨器中研磨,，加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨，待勻漿后轉至 1.5mL 滅菌離心管中,，8000rpm 離心 2min,，取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中；泄殖腔拭子直接取 100μL 提取
1.2核酸提取
推薦采用優(yōu)利科（上海）生命科學有限公司生產的核酸提取或純化試劑（磁珠法或離心柱法）進行核酸提取,，請 按照試劑說明書進行操作,。
2.試劑配制（試劑準備區(qū)）
根據(jù)待檢測樣本總數(shù)，設所需要的 PCR 反應管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對照+1 管陽性對照,；反應管數(shù)每滿 10 份,，多配制 1 份),，每測試反應體系配制如下表：
試劑FADV 反應液酶液
用量（樣本數(shù)為 N）20μL1μL
3.加樣（樣本處理區(qū)）
將步驟 1 提取的核酸、陽性質控品,、陰性質控品各取 4μL,，分別加入相應的反應管中，蓋好管蓋,，混勻， 短暫離心,。
4.PCR 擴增（核酸擴增區(qū)）
4.1將待檢測反應管置于熒光定量 PCR 儀反應槽內,；
4.2設置好通道、樣品信息,，反應體系設置為 25μL,；
熒光通道選擇： 檢測通道（Reporter Dye）FAM， 淬滅通道（Quencher Dye）NONE,，請勿選擇 ROX 參比熒光,。
4.3推薦循環(huán)參數(shù)設置：
步驟循環(huán)數(shù)溫度時間收集熒光信號
11 cycle95℃10min否
240 cycles94℃15sec否
55℃30sec是
5.結果分析判定
5.1結果分析條件設定
設置 Baseline 和 Threshold：一般直接按機器自動分析的結果分析，當曲線出現(xiàn)整體傾斜時,，根據(jù)分析后圖像調節(jié) Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內調節(jié)),、stop 值(一般可在 5~20 范圍內調節(jié))，以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照),，重新分析結果,。
5.2結果判斷
陽性：檢測通道 Ct 值≤35，且曲線有明顯的指數(shù)增長曲線,；
可疑：檢測通道 35<Ct 值≤38,，建議重復檢測，如果檢測通道仍為 35<Ct 值≤38,，且曲線有明顯的增長曲線,， 判定為陽性，否則為陰性,；
陰性：樣本檢測結果 Ct 值>38 或無 Ct 值,。
6.質控標準
陰性質控品：Ct>38 或無 Ct 值顯示；
陽性質控品：擴增曲線有明顯指數(shù)生長期,，且 Ct 值≤32,； 以上條件應同時滿足，否則實驗視為無效,。
7.檢測方法的局限性
1.樣本檢測結果與樣本收集,、處理、運送以及保存質量有關,；
2.樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,，會出現(xiàn)假陽性結果；
3.陽性對照、擴增產物泄漏,，會導致假陽性結果,；
4.病原體在流行過程中基因突變、重組,，會導致假陰性結果,；
5.不同的提取方法存在提取效率差異，會導致假陰性結果,；
6.試劑運輸,，保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降，出現(xiàn)假陰性或定量檢測不準確的結果,；
7.本檢測結果僅供參考,，如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。
【注意事項】
1.所有操作嚴格按照說明書進行,；
2.試劑盒內各種組分使用前應自然融化,，完-全混勻并短暫離心；
3.反應液應避光保存,；
4.反應中盡量避免氣泡存在,，管蓋需蓋緊；
5.使用一次性吸頭,、一次性手套和各區(qū)專用工作服,；
6.樣本處理、試劑配制,、加樣需在不同區(qū)進行,，以免交叉污染；
7.實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器,；
8.試劑盒里所有物品應視為污染物對待,，并按照《微生物生物醫(yī)學實驗室生物安全通則》進行處理。
【參考文獻】
[1]文艷玲, 禽腺病毒 hexon 基因克隆表達及間接 ELISA 和熒光 PCR 檢測方法的建立[J]. 廣西大學, 2008.
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