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北京博奧森生物技術(shù)有限公司

新品上市丨還在苦苦思索實驗失敗原因,? 這篇IHC秘籍快來收好,!

時間:2023-8-9 閱讀:665
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   免疫組織化學(Immunocytochemistry, IHC) 是一門利用抗原與抗體特異性結(jié)合的原理,通過化學反應使標記抗體的顯色劑顯色的技術(shù),,能夠?qū)M織細胞內(nèi)的抗原進行定位,、定性及相對定量檢測,進而深入探究其功能,。

IHC實驗步驟繁瑣,,包括切片制作(固定,脫水,,透明,,包埋,切片,,貼片,,烤片),,脫蠟,,水化,,阻斷,抗原修復,,封閉,,一抗孵育,二抗孵育,,顯色,,復染,封片和分析等,,每一個細節(jié)都可能影響到最終的染色結(jié)果,。無論是從沒做過IHC的實驗小白,還是想要對當前方法進行優(yōu)化的大牛,,這篇秘籍都能讓您有所收獲,。——Bioss全新上市的IHC即用型試劑盒,助您一次獲得文獻級的圖像結(jié)果,。



切片制作

1.染色結(jié)果不理想,,細胞核發(fā)灰模糊,對比不鮮明,。
解決方法:①半小時內(nèi)完成取材,,組織離體后盡快固定;
②固定液選擇視組織而定,,有致密外膜用Carnoy液,,活檢用Bouin液,固定液體積要超過組織體積5倍以上,,量少應中途換液1~3次,;

③固定時間在4~24 h之間,長時間固定會影響抗原決定簇的暴露,,且容易出現(xiàn)自發(fā)熒光及非特異性染色,。

2.蠟塊出現(xiàn)組織收縮凹陷,在抗原修復時脫片,。
解決方法:①梯度酒精脫水盡量充分,;
②二甲苯脫蠟時間不宜長,1~3 h最佳,,脫蠟過度會導致組織發(fā)硬發(fā)脆,;
③浸蠟應選擇低熔點的石蠟,并充分浸蠟,;

④抗原修復時,,高壓時間過長,,應適當縮短時間。

3.切片太厚,,脫片,,影響染色結(jié)果。
解決方法:①切片厚度視組織而定,,如同淋巴結(jié),、腎等組織需要比較薄(不超過3 um),,腦組織需要較厚(尤其是取新鮮標本冰凍制片時),,6-8 um最佳,冰凍可切至10 um,;其他一般如胃腸道,、肝膽等等組織,2-4 um為宜,,太厚易導致細胞重疊,,影響觀察;
②切片角度和刀片新舊程度對切片效果的影響較大,,切片角度視切片機型號而異,,新刀片更易切出完好的切片;
③撈片要求一步到位,,輕夾輕放,,達到無皺折、無氣泡,,水溫控制在40℃左右,;
④粘片時玻片可用多聚賴氨酸或蛋白甘油處理,或選擇防脫片,,以增強粘附性,;

⑤烘干溫度為50℃,時間為12~24 h,。

4.染色不均勻,。
解決方法:①切片厚度不一致,需更換刀片,,調(diào)整切片機狀態(tài),;
②試劑配制未混勻,導致局部濃度不一致,,應將試劑充分混勻后滴加,;
③在滴加試劑時讓試劑覆蓋組織;

④脫蠟不全,,可更換脫蠟劑或延長脫蠟時間,。

5.切片邊緣著色(邊緣效應),。
解決方法:①組織邊緣與玻片粘貼不牢,邊緣組織松脫漂浮在液體中,,每次清洗不易將組織下面試劑洗盡,。玻片清洗干凈后應用APES或多聚賴氨酸處理,并確保組織切片盡量薄,,盡量避免選用壞死較多的組織,;

②切片上滴加的試劑未覆蓋均勻或未覆蓋到全部組織,,邊緣的試劑少,,容易變干,導致邊緣的試劑濃度比中心區(qū)域的高,,而使得染色結(jié)果偏深,。滴加試劑時要均勻且充分覆蓋到全部組織,為防止邊緣水分減少,,滴加試劑時可以適當超出組織邊緣2 mm左右,,保證組織部分覆蓋均勻。用組化筆畫圈時,,距組織邊緣3-4 mm為宜,,避免油劑對實驗結(jié)果的影響。

6.目標蛋白定位異常,。
解決方法:①使用新鮮組織切片,,
②固定不充分導致組織自溶,損壞,,適當延長固定時間,;
③根據(jù)組織大小,提高固定劑與組織的比例,,切取小組織塊,,浸泡固定更加充分;
④固定劑使用不當,,根據(jù)目標蛋白和樣品組織性質(zhì)選擇不同固定劑,;
⑤優(yōu)化固定條件,包括濃度,、溫度,、固定時間等;

⑥抗原擴散,,嘗試使用交聯(lián)固定劑而不是有機(醇類)固定劑,。

7.染色結(jié)果呈弱陽性

解決方法:①不當?shù)墓潭ǚ绞交蚬潭〞r溫度過高,,影響待測抗原的數(shù)量和質(zhì)量,,應根據(jù)組織選擇更適宜的固定方式及溫度,。

8.陽性檢測率及著色強度相對減弱,甚至無染色,。
解決方法:①固定液封閉了抗體識別表位,,應縮短固定時間,增加抗原修復,;
②靶蛋白含量低,,建議增加抗體使用量或利用放大步驟來放大信號;
③靶蛋白為膜蛋白而表位可能因為滲透作用被破壞或移除,,建議將緩沖液中的滲透試劑減少或移除,。
④組織較厚,建議做細胞破膜,,以便抗體順利進入胞內(nèi)與相應抗原結(jié)合,。

抗原修復

1. 陽性檢測率及著色強度相對減弱,甚至無染色,。
解決方法:①抗原修復緩沖液有多種,,常用的有檸檬酸鹽緩沖液(pH 6.0),EDTA緩沖液(pH 8.0-9.0),,Tris / Tris-EDTA緩沖液(pH 9.0-10.0),,和胰酶(pH 3.5±0.2),修復液的PH值對染色結(jié)果的影響比較大,,具體選擇應視情況而定,;
②抗原修復不足,由于固定步驟引起的蛋白交聯(lián)導致抗原仍未被修復會導致染色減弱,,需使用正確的抗原修復方法,,如微波熱修復及高壓熱修復等;
③迅速冷卻,,加熱結(jié)束后迅速用冷水澆淋使修復液急速降溫,,可能造成抗原暴露不充分,且降溫太快,,組織和載玻片的收縮系數(shù)不同易使組織脫片,,應采用平緩冷卻,即讓修復液溫度平緩下降的方式,。
2.背景染色較深,。
解決方法:①固定過度,需摸索修復條件,,改變抗原修復方法或減小抗原修復強度,;
②抗原修復過程中,切片干涸,。修復液溢出后未及時補充液體,、染色切片太多,、動作太慢、忘記滴液,、滴液流失等都是造成組織變干的原因,。解決的辦法是操作要認真仔細,采用DAKO筆或PAP Pen在組織周圍畫圈,,可以有效的避免液體流失,,提高操作速度;

③避免切片在緩沖液或修復液中浸泡時間過長(大于 24 h),。

3.結(jié)果出現(xiàn)弱陽,。

解決方法:①不適當?shù)目乖迯头绞剑瑢е驴乖瓫Q定簇暴露不足,,需摸索修復條件,,改變抗原修復方法。

4.目標蛋白定位異常,。
解決方法:①抗原修復過強,導致組織結(jié)構(gòu)被破壞,,蛋白轉(zhuǎn)移,。應優(yōu)化抗原修復程序或嘗試不同的抗原修復方法,注意保留組織完整形態(tài),。

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