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行業(yè)產(chǎn)品

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[供應(yīng)]葉綠素熒光測量儀
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  • 葉綠素熒光測量儀
貨物所在地:
北京北京市
產(chǎn)地:
北京
更新時間:
2024-06-28 21:00:18
有效期:
2024年6月28日 -- 2024年12月28日
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(聯(lián)系我們,請說明是在 化工儀器網(wǎng) 上看到的信息,,謝謝!)

產(chǎn)品簡介

FL6000雙調(diào)制葉綠素熒光測量儀是FL3500雙調(diào)制葉綠素熒光儀的新升級版,,專門用于對藍綠藻或綠藻等微藻,,葉綠體或類囊體懸浮物進行光合作用深入機理研究的強大科研工具。

詳細介紹

FL6000雙調(diào)制葉綠素熒光測量儀

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FL6000雙調(diào)制葉綠素熒光測量儀FL3500雙調(diào)制葉綠素熒光儀的新升級版,,專門用于對藍綠藻或綠藻等微藻,,葉綠體或類囊體懸浮物進行光合作用深入機理研究的強大科研工具。儀器具備雙通道測量控制,,可控制測量樣品的溫度,,并配備單翻轉(zhuǎn)光(STF),內(nèi)置多種可用戶自行修改的測量程序,,可進行目前國際上對于葉綠素熒光的各種深入機理研究,。其核心結(jié)構(gòu)是包含了一個懸浮液標準樣品杯的光學(xué)測量頭,內(nèi)置3LED光源和1500 kHz/16 AD 轉(zhuǎn)換的PIN二極管信號檢測器,。AD轉(zhuǎn)換的增益和積分時間可以通過軟件控制,。檢測器測量葉綠素熒光信號的時間分辨率可高達4 µs(快速版為1µs)。

應(yīng)用領(lǐng)域:

· 植物光合特性和代謝紊亂篩選

· 生物和非生物脅迫的檢測

· 植物抗脅迫能力或者易感性研究

· 代謝混亂研究

· 光合系統(tǒng)工作機理研究

· 受脅迫植物光合生理應(yīng)對策略研究


典型樣品:

· 藍藻(藍細菌)

· 綠藻

· 葉綠體懸浮物

· 類囊體懸浮物

· 植物碎片

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功能特點:

· 內(nèi)置葉綠素熒光誘導(dǎo)測量,、PAM(脈沖調(diào)制)測量,、OJIP快速熒光動力學(xué)測量、QA–再氧化動力學(xué),、S狀態(tài)轉(zhuǎn)換、葉綠素熒光淬滅等測量程序,,是功能全面的葉綠素熒光儀

· 雙調(diào)制技術(shù),,可雙色調(diào)制測量光,具備調(diào)制光化學(xué)光和持續(xù)光化學(xué)光,,可進行STF(單周轉(zhuǎn)光閃),、TTF(雙周轉(zhuǎn)光閃)和MTF(多周轉(zhuǎn)光閃)及定制FRR技術(shù)(Fast Repetition Rate)測量

· 標準版時間分辨率達4µs,快速版更高達1µs,,是目前時間分辨率高的葉綠素熒光儀

· 控制單元為雙通道,,可連接溫度傳感器用于溫度控制、連接氧氣測量單元用于希爾反應(yīng)測量等

· 具備高靈敏度,,低檢測極限為1μg Chla/L

· 測量光,、光化光、飽和單反轉(zhuǎn)光光源顏色,、強度均可定制

· 主機配備彩色觸摸顯示屏,,可實時查看熒光曲線圖


技術(shù)參數(shù):

· 實驗程序:葉綠素熒光誘導(dǎo)測量;PAM(脈沖調(diào)制)測量;OJIP快速熒光動力學(xué)測量,;QA–再氧化動力學(xué),;S狀態(tài)轉(zhuǎn)換;快速葉綠素熒光誘導(dǎo)

· 熒光參數(shù):

ú PAM熒光淬滅動力學(xué)測量:F0,,Fm,,FvF0,,Fm,,FvQY(II),,NPQ,,ΦPSIIFv/Fm,,Fv’/Fm,,RfdqN,,qP,,ETR50多項葉綠素熒光參數(shù)與曲線;

ú OJIP快速熒光動力學(xué)測量:OJIP曲線與F0,、FJ,、FiFm,、Fv,、VJVi,、Fm / F0,、Fv / F0Fv / Fm,、M0,、AreaFix Area,、SM,、SSN,、Phi_P0,、Psi_0Phi_E0,、Phi_D0,、Phi_PavABS / RCTR0 / RC,、ET0 / RC,、DI0 / RC20多項相關(guān)參數(shù);

ú QA–再氧化動力學(xué)(QA- reoxidation kinetics):測量QA–再氧化動力學(xué)曲線,,用于擬合QA–再氧化過程中快相(Fast phase),、中間相(Middle phase)和慢相(Slow phase)各自的振幅(A1A2,,A3)和時間常數(shù)(T1,,T2T3

ú S狀態(tài)轉(zhuǎn)換(S-state test):S-state test熒光衰減曲線,,用于擬合計算無活性光系統(tǒng)II PSIIX)反應(yīng)中心數(shù)量

ú 提供用戶自定義protocol功能,,可實現(xiàn)PSII天線異質(zhì)性PSIIαPSIIβ分析、PSII有效天線截面積(s PSII)等參數(shù)的測量

QA–再氧化動力學(xué)曲線和S-state test熒光衰減曲線(Li,,2010

 

· 時間分辨率(采樣頻率):高靈敏度檢測器,,標準版時間分辨率為4µs,快速版為1µs

· 低檢測極限:1μg Chla/L

· 控制單元:配備彩色觸摸顯示屏,,可實時查看熒光曲線圖

· Superhead測量室:

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測量光閃:617nm紅橙光和455nm藍光,,光閃時間25µs

單周轉(zhuǎn)飽和光閃:標準光源為630nm紅光,可選配455nm藍光,,大光強80000 µmol(photons)/m2.s,,光閃時間2050µs 

持續(xù)光化學(xué)光:標準光源為630nm紅光,可選配455nm藍光,,任選其一,,大光強3000 µmol(photons)/m2.s

樣品試管:底面積10×10mm,容積4ml

AD轉(zhuǎn)換器:500 kHz/16bit

· 定制superhead測量室(選配):可分別定制測量光,、飽和光閃和光化學(xué)光顏色(藍色,、青色、琥珀色等)以及檢測波段(ChlA,,ChlB

· 遠紅外光源(選配):用于激發(fā)光系統(tǒng)I,波長735nm

· 氧氣測量模塊(選配):測量藻類的氧氣釋放

· 溫度控制(選配):TR 2000溫度調(diào)節(jié)器,,控溫范圍070℃,,精確度0.1

· 電磁攪拌(選配)密封不銹鋼外殼,IP64防護等級,,手動轉(zhuǎn)扭調(diào)速100-1000rpm,,8mm×3mm標準磁力棒

· 通訊接口:USB

· FluorWin軟件:定義或創(chuàng)建實驗方案、光源控制設(shè)置,、數(shù)據(jù)輸出,、分析處理和圖表顯示

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典型應(yīng)用:

1. 中科院水生生物所王強研究員使用FL3500葉綠素熒光儀(FL6000之前型號)和TL植物熱釋光系統(tǒng)證明亞硝酸鹽脅迫首先影響Synechocystis sp. PCC 6803 PSII受體側(cè)(Zhan X, et al, 2017)。這種光合作用深入機理的研究經(jīng)常需要這兩種儀器來配合完成。

2.中科院新疆生態(tài)與地理研究所潘響亮研究員及其課題組使用FL3500葉綠素熒光儀(FL6000之前型號)深入開展了環(huán)境中重金屬,、鹽分,、有毒化合物、除草劑,、殺蟲劑,、抗生素等各種有害物質(zhì)對藻類的毒理研究。通過FL3500的高分辨率OJIP快速熒光動力學(xué)測量,、QA–再氧化動力學(xué),、S狀態(tài)轉(zhuǎn)換等葉綠素熒光測量程序,全面揭示了不同濃度與處理時間對藻類光合系統(tǒng)造成損傷的毒理機制及其生態(tài)影響,。目前,,潘響亮課題組已經(jīng)使用FL3500FL6000之前型號)在國際SCI期刊與國內(nèi)核心期刊上發(fā)表了二十余篇高水平文章。

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1. 不同濃度六價鉻處理后的藍藻快速熒光OJIP曲線

2. 不同濃度六價鉻處理后的藍藻S狀態(tài)轉(zhuǎn)換曲線

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3. 不同濃度六價鉻處理后的藍藻QA–再氧化動力學(xué)曲線

產(chǎn)地:捷克

參考文獻:

1. Manaa A, et al. 2019. Salinity tolerance of quinoa (Chenopodium quinoa Willd) as assessed by chloroplast ultrastructure and photosynthetic performance. Environmental and Experimental Botany 162: 103-114

2. Yu Z, et al. 2019. Sensitivity of Chlamydomonas reinhardtii to cadmium stress is associated with phototaxis. Environmental Science: Processes & Impacts 21: 1011-1020

3. Liang Y, et al. 2019. Molecular mechanisms of temperature acclimation and adaptation in marine diatoms. The ISME journal, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9

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8. Antal T, Konyukhov I, Volgusheva A, et al. 2018. Chlorophyll fluorescence induction and relaxation system for the continuous monitoring of photosynthetic capacity in photobioreactors. Physiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.12693

9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.Simulation of chlorophyll fluorescence rise and decay kinetics, and P700-related absorbance changes by using a rule-based kinetic Monte-Carlo method. Photosynthesis Research. DOI:10.1007/s11120-018-0564-2

10. Biswas S, Eaton-Rye J J, et al. 2018. PsbY is required for prevention of photodamage to photosystem II in a PsbM-lacking mutant of Synechocystis sp. PCC 6803. Photosynthetica, 56(1), 200–209.

11. Bonisteel E M, et al. 2018. Strain specific differences in rates of Photosystem II repair in picocyanobacteria correlate to differences in FtsH protein levels and isoform expression patterns. PLoS ONE 13(12): e0209115.

12. Fang X, et al. 2018. Transcriptomic responses of the marine cyanobacterium Prochlorococcus to viral lysis products. Environmental Microbiology, doi: 10.1101/394122.

13. Kuthanová Trsková E, Belgio E, Yeates A M, et al. 2018. Antenna proton sensitivity determines photosynthetic light harvesting strategy, Journal of Experimental Botany 69(18): 4483-4493




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