PCR實驗室污染怎么辦,？
閱讀：1398 發(fā)布時間：2021-8-16
PCR檢測因其高靈敏度,、快速,、操作方便等優(yōu)勢已經(jīng)被廣泛應用，不過正是由于它靈敏度*,，極微量的污染源都有可能導致檢測結果的假陽性,，因此，如何避免以及處理實驗室污染,，對PCR人來說是一門必修課,。
主要是在采（取）樣的過程中,，由于取樣工具之間的交叉造成污染,；或者在核酸提取的過程中，由于移液器,、離心管等使用不當導致的污染,。主要是在PCR試劑配制過程中，由于移液器,、容器,、陰性對照及其它試劑被核酸模板或陽性對照污染。在實驗室操作中經(jīng)常會用到陽性參考品,，這些陽性參考品大多數(shù)是由某些克隆質粒制作而成,，克隆質粒在單位容積內濃度高，不小心使用極易造成污染,。這是PCR反應中主要常見的污染問題,。因為PCR產(chǎn)物拷貝量大，遠遠高于PCR檢測數(shù)個拷貝的極限,，所以極微量的PCR產(chǎn)物污染,，就可造成假陽性結果。還有一種容易忽視,，可能造成PCR產(chǎn)物污染的形式是氣溶膠污染,，在空氣與液體面摩擦時就可形成氣溶膠，據(jù)計算一個氣溶膠顆粒可含4.8萬拷貝,，因而由其造成的污染是一個值得特別重視的問題,。
（2）購買市面上有效氯消毒片,，根據(jù)要求配制不同濃度的消毒液,，或者購買成品次氯酸鈉消毒液配制合適濃度消毒水；（3）購買核酸氣溶膠污染清除劑（DNA AWAY®原液/MediClean®稀釋100倍）,；（4）無紡布/無塵紙等。
（1）清理廢液缸并且對廢液缸用有效氯含量為2000mg/L消毒水浸泡消除核酸污染,；（2）用有效氯含量為2000mg/L消毒水對移液槍進行擦洗,，關鍵部位為移液槍前端易污染部位，清潔干凈后用潔凈水再擦拭一遍,；（3）將離心管架,、擴增管架、擴增管架底板,、吸嘴盒及其他相關物品用有效氯含量為500mg/L的消毒水浸泡2小時后,，用清水沖洗干凈晾干后使用；（4）對污染區(qū)域內的設備如擴增儀,、全自動提取儀等,，使用核酸氣溶膠污染清除劑進行反復處理；對生物安全柜等含有空氣過濾系統(tǒng)的設備,，需更換過濾網(wǎng),；（5）用有效氯含量為500mg/L的消毒液對整個實驗室（地板、墻面,、天花板,、門、窗戶等地方）進行清潔,，并且用用有效氯含量為1000mg/L的消毒水對實驗室進行噴霧消毒(重點部位為操作區(qū)),，有效降解空氣中的氣溶膠與附著在實驗臺表面的核酸污染；同時加大通風量（內循環(huán)無用,，盡可能外循環(huán)）,；（6）待污染區(qū)域及設備器件清理完成后，常用設備和操作臺面使用移動紫外消毒車近距離輻照1小時,；實驗室內則使用室內紫外燈整晚輻照,。步驟（1）-（6）必須堅持每天進行，確保消除實驗室污染,；
設計陰性對照組,，根據(jù)陰性對照確認污染情況。可使用敞開后隔夜放置操作區(qū)的陰性對照進行實驗（在單獨的實驗室驗證）,，若連續(xù)三天陰性對照沒有起跳,，則說明污染得到控制，可恢復正常實驗,。當然,，為較大程度的降低可能出現(xiàn)的PCR污染或杜絕污染的出現(xiàn)，在實驗室前期設計及日常實驗室管理和操作中,，就需要進行合理的規(guī)劃以及嚴格執(zhí)行實驗室SOP,，把污染的可能性扼殺在搖籃中。
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