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1.前言
在分子克隆實驗中,感受態(tài)細胞轉(zhuǎn)化是基因克隆的基礎(chǔ)步驟之一,。但相信很多同學(xué)在涂板后,,常常會出現(xiàn)平板上菌落稀少甚至“空空如也"的尷尬局面,這不僅耽誤我們的實驗進度,,還會消耗寶貴的試劑和時間,。實驗為何會卡在這一步?本篇文章,,將從幾個關(guān)鍵環(huán)節(jié)入手,,一起和大家好好探討一下這個問題。
2.感受態(tài)細胞“不給力"
感受態(tài)細胞的轉(zhuǎn)化效率直接決定了實驗成敗。如果細胞本身質(zhì)量不佳,,后續(xù)操作再完好也無濟于事,。例如感受態(tài)細胞經(jīng)常反復(fù)凍融或長期儲存(超過6個月),則很有可能會導(dǎo)致其活性顯著下降,。
感受態(tài)細胞是非常脆弱的,,一些操作上的失誤同樣會嚴(yán)重影響轉(zhuǎn)化效率,,凍融過程中如果未將細胞置于冰上,,則可能會破壞細胞膜的脆弱結(jié)構(gòu);解凍后若未及時使用(如放置超過10分鐘),,細胞活性會快速下降,;加入質(zhì)粒后劇烈吹打也會破壞細胞膜,進一步降低轉(zhuǎn)化成功率,。正確的操作應(yīng)該是:凍融時需全程冰上操作,,解凍后立即進行轉(zhuǎn)化反應(yīng),質(zhì)粒加入后僅需輕彈混勻,。
3 質(zhì)?!坝昧?不當(dāng)或與宿主菌不兼容
質(zhì)粒是轉(zhuǎn)化成功的核心,但它的用量常被忽視,。在感受態(tài)細胞轉(zhuǎn)化實驗中,,質(zhì)粒的用量需通過質(zhì)量(ng) 而非體積(μL)去控制。
若僅依賴體積添加,,就可能會因為質(zhì)粒濃度差異導(dǎo)致實際用量超出合理范圍(通常建議是 50-100 ng),,進而影響轉(zhuǎn)化效率。我們可以利用分光光度計測量質(zhì)粒濃度,,再依照公式:體積(μL)= 目標(biāo)質(zhì)量(ng) / 質(zhì)粒濃度(ng/μL),,計算出所需添加的體積。
某些質(zhì)粒需要特定宿主菌才能正常復(fù)制或表達,。例如pET系列質(zhì)粒需使用BL21(DE3)菌株表達蛋白,,因為該菌株通過λ噬菌體DE3溶源整合,染色體攜帶T7 RNA聚合酶基因,,可驅(qū)動pET質(zhì)粒的T7啟動子轉(zhuǎn)錄目標(biāo)基因,。若質(zhì)粒與宿主菌的復(fù)制起點不兼容不匹配,則可能導(dǎo)致質(zhì)粒無法復(fù)制,,轉(zhuǎn)化后無菌落,。
4 熱激條件不“精準(zhǔn)"
熱激是感受態(tài)細胞吸收質(zhì)粒的關(guān)鍵步驟,其溫度,、時間和操作順序需嚴(yán)格控制,。若條件不精準(zhǔn),可能導(dǎo)致質(zhì)粒無法有效進入細胞或細胞膜修復(fù)過快,,影響轉(zhuǎn)化效率,。熱激時間過短,會導(dǎo)致無法充分打開細胞膜孔道,;而熱激時間過長則可能損傷細胞,。
熱激完后,我們還需要將細胞放在冰上冰浴一段時間,,這一步的目的是修復(fù)細胞膜裂隙,,避免細胞因膜結(jié)構(gòu)破損而死亡,。如果少了這一步,就可能導(dǎo)致細胞膜無法閉合,,轉(zhuǎn)化效率下降或細胞死亡,。
5 抗生素“過量"或“失效"
抗生素是篩選成功轉(zhuǎn)化的抗性菌落的關(guān)鍵,,但如果抗生素失效或濃度過高會直接導(dǎo)致轉(zhuǎn)化菌篩選失敗。儲存不當(dāng)或過期的抗生素會失去抑菌活性,,而濃度過高則會抑制目標(biāo)菌生長,。操作失誤,如使用添加錯誤類型抗性平板,,也會導(dǎo)致實驗失敗,。
6 涂板操作不“細致"
涂板是轉(zhuǎn)化的最后一步,一些操作上的細節(jié)疏漏也可能導(dǎo)致前功盡棄,。涂布量過多或過少會影響菌落密度與生長效率,,建議控制涂布量在10-50 μL。菌液未充分混勻或涂布器未覆蓋整個平板表面,,導(dǎo)致局部菌落過密或空白,。而如果使用涂布棒用力摩擦瓊脂表面,損傷細胞或菌液堆積,。
正確的操作應(yīng)該是:加入菌液后,使用無菌涂布棒輕柔旋轉(zhuǎn),,充分分散菌液,;涂布后需靜置5分鐘,待菌液被平板全部吸收后再倒置培養(yǎng),,防止冷凝水滴落污染菌落,。
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