DNA 純化是分子生物學(xué)研究中經(jīng)常需要用到的一種方法。一般來說,，做DNA 純化有3 個(gè)目的：1. 獲得高純度的DNA,；2. 濃縮DNA；3. 用DNA做測序,，芯片等生物信息學(xué)方面的實(shí)驗(yàn),。下面，談一談DNA純化的幾種常用方法,。

DNA 純化實(shí)驗(yàn)基本上可以分為 PCR 清潔試劑盒純化法和DNA凝膠回收純化法兩大類,。PCR 清潔試劑盒純化法又稱為硅膠膜吸附法。因?yàn)樗脑硎牵汗枘z膜可在高鹽條件下結(jié)合 DNA,， 又可在低鹽條件下與DNA分離,。而 DNA 溶液中的其他渣渣包括引物、單核苷酸,、酶,、礦物油、鹽離子等,，因?yàn)闆]有 DNA 的這種神特性,，所以會(huì)被分離開來。  

如果你的 PCR 產(chǎn)物得到的是單一條帶,，*可以直接純化,。那么問題來了。如果發(fā)現(xiàn)有雜帶,？怎么辦,？有哪些辦法可以提取得更干凈？

那么就誕生了我們的第二種方法：DNA 凝膠回收純化法,。這種方法簡單粗暴有效率,，也能純化得比較*。現(xiàn)在已經(jīng)慢慢地取代了第一種方法,，成為了DNA 純化的主流方法,。 擴(kuò)增時(shí)出現(xiàn)非特異性條帶，那么在膠回收時(shí)切膠很重要,，切膠時(shí)盡量選擇目的基因條帶,，可以將目的基因所在的膠的邊緣棄去一些，盡量不要切上含有非特異性帶的膠,。切膠之后就是回收了,，這里分享個(gè)小竅門,，回收可以用酚氯仿,。

PCR 產(chǎn)物經(jīng)過酶切、回收等步驟后，損失太大,。合適的做法是：簡化步驟,、減少核酸在處理過程中的損失，讓較多量的 PCR 產(chǎn)物和質(zhì)粒片斷進(jìn)入酶連反應(yīng)——以量取勝,。DNA 凝膠回收純化法是很粗放型的,，但是成功率很高。如果愿意,，你可以試試,。

大致的做法是：制作 100 μL PCR 產(chǎn)物；酒精沉淀回收 PCR 產(chǎn)物,；PCR 產(chǎn)物及載體酶切,；跑回收膠；將回收膠上的 PCR 產(chǎn)物和載體片斷切下,，回收到一個(gè)試管中,；冰凍、碎膠,，酚,、氯仿 抽提，酒精沉淀,；加入8微升水,、1 微升連接酶和 1 微升連接 buffer，4 度過夜,；轉(zhuǎn)化涂板,。

PCR 產(chǎn)物回收 

1. 制備 100μL PCR 產(chǎn)物。 

2. 將 100μL PCR 產(chǎn)物加入一 1.5mL 離心管中,，再加入 400μL 雙蒸水,，顛倒混勻。加入 900μL  預(yù)冷無水乙醇,、20μL3M 的醋酸鈉,。顛倒數(shù)次混勻。（提示 本方法使用的醋酸鈉量較小,，但足夠沉淀核酸,，并且無需洗鹽。） 

3. 4℃靜置 30 分鐘,，以利于核酸沉淀,。 

4. 12000rpm 4℃ 離心 15 分鐘，沉淀核酸,。 

5. 棄上清,，將離心管倒置于干凈吸水紙巾上 5 分鐘,。室溫下吹風(fēng)干燥。（提示 可將試管置于超凈臺(tái)吹風(fēng)干燥,。如果管底有較多液體聚集,，可蓋好管蓋后，輕彈管底數(shù)次,，將液體分散掛在管壁上,，再打開管蓋吹風(fēng)。） 

酶切直接在回收 PCR 產(chǎn)物的試管中配置酶切體系,。1%瓊脂糖回收膠回收（碎膠,、酚氯仿抽提法）。 

綜上所述,，純化的主要目的就是要去除蛋白質(zhì),。而酚氯仿混合液能有效地使蛋白質(zhì)變性，同時(shí)抑制 RNAase 的活性,，酚氯仿還可以減少酚在核酸溶液中的痕量,。所以是一種好東西。