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雙縮脲法蛋白質(zhì)含量檢測試劑盒說明書
產(chǎn)品貨號:R22025
產(chǎn)品規(guī)格:100管/96樣
產(chǎn)品簡介:
樣品可溶性蛋白質(zhì)含量常常用于酶活性計算,。此外,,可溶性蛋白質(zhì)含量也用于食品等質(zhì)量分析。 強堿性溶液中,,雙縮脲與 CuSO4形成紫色絡(luò)合物,;紫色絡(luò)合物顏色的深淺與蛋白質(zhì)濃度成正比,而與 蛋白質(zhì)分子量及氨基酸成分無關(guān),,故可用來測定蛋白質(zhì)含量,。該方法測定范圍為 1~10mg 蛋白質(zhì),適用于 蛋白質(zhì)濃度高的樣品,,尤其是動物材料,。
自備儀器和用品:
1. 可見分光光度計/酶標(biāo)儀
2. 移液器
3. 微量玻璃比色皿/96 孔板
4. 蒸餾水
試劑組成和配制:
試劑一:液體 20ml×1 瓶,4℃保存,。
標(biāo)準(zhǔn)品:液體 1ml×1 支,,5 mg/ml,-20℃保存,。
樣品中可溶性蛋白質(zhì)提取:
1. 液體樣品:澄清無色液體樣品可以直接測定,。
2. 組織樣品:按照組織質(zhì)量(g):提取液體積(ml)為 1:5~10 的比例(建議稱取約 0.1g 組織,加入 1ml 提取液(自備,根據(jù)需要選用酶提取緩沖液或者蒸餾水或者生理鹽水))冰浴勻漿,,10000rpm,,4℃離 心 10min,取上清,,即待測液,。(動物樣品常常需要稀釋)
3. 細(xì)菌、真菌:按照細(xì)胞數(shù)量(10 4個):提取液體積(ml)為 500~1000:1 的比例(建議 500 萬細(xì)胞 加入 1ml 提取液),,冰浴超聲波破碎細(xì)胞(功率 300w,,超聲 3 秒,間隔 7 秒,,總時間 3min);然 后 8000rpm,,4℃,,離心 10min,取上清置于冰上待測,。
測定步驟:
1. 分光光度計/酶標(biāo)儀預(yù)熱 30 min 以上,,調(diào)節(jié)波長到 540 nm,蒸餾水調(diào)零,。
2. 空白管:取 0.5 mlEP 管,,加入 40ul蒸餾水,200ul試劑一,,混勻后室溫靜置 15 min,,取 200 ul于微量玻璃比色皿/96 孔板,540nm 比色,,記為 A1 空白管,。
3. 標(biāo)準(zhǔn)管:取 0.5 mlEP 管,加入 40ul標(biāo)準(zhǔn)液,,200ul試劑一,,混勻后室溫靜置 15 min,取 200 ul于微量玻璃比色皿/96 孔板,,540nm 比色,,記為 A2 標(biāo)準(zhǔn)管。
4. 測定管:取 0.5 mlEP 管,,加入 40ul待測液,,200ul試劑一,混勻后室溫靜置 15 min,,取 200 ul于微量玻璃比色皿/96 孔板,,540nm 比色,記為 A3 測定管。
樣品中蛋白質(zhì)濃度計算:
1,、按液體體積計算:
蛋白質(zhì)(mg/ml)= C 標(biāo)準(zhǔn)管÷(A 標(biāo)準(zhǔn)管-A 空白管)×(A 測定管-A 空白管) =5÷(A 標(biāo)準(zhǔn)管-A 空白管)×(A 測定管-A 空白管)
2,、按樣本鮮重計算:
蛋白質(zhì)(mg/g 鮮重)= C 標(biāo)準(zhǔn)管÷(A 標(biāo)準(zhǔn)管-A 空白管)×(A 測定管-A 空白管) × V 樣總÷W =5÷(A 標(biāo)準(zhǔn)管-A 空白管)×(A 測定管-A 空白管) ÷W
3、按細(xì)胞數(shù)量計算:
蛋白質(zhì)(mg/10 4 cell)= C 標(biāo)準(zhǔn)管÷(A 標(biāo)準(zhǔn)管-A 空白管)×(A 測定管-A 空白管) × V 樣總 ÷500 =0.01÷(A 標(biāo)準(zhǔn)管-A 空白管)×(A 測定管-A 空白管)
C 標(biāo)準(zhǔn)管:5mg/ml,;V 樣總:樣本總體積,,1ml;W:樣本鮮重,,g,;500:細(xì)胞總數(shù),500 萬,。
注意事項:
1. 樣品蛋白濃度須在 1~10mg/ml 范圍內(nèi),,低于 1mg/ml 不能用此法,高于 10mg/ml 須做相應(yīng)稀釋,。因 此測定前用 1~2 個樣做預(yù)實驗,,確保蛋白濃度在 1~10mg/ml 范圍內(nèi)。
2. 待測樣品蛋白提取可用生理鹽水,、雙蒸水或不含蛋白的 PBS 提取,。該法受硫酸銨、Tris 緩沖液干擾,, 提取液中應(yīng)不含這些物質(zhì),;否則改用 BCA 蛋白質(zhì)含量測定試劑盒。
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