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細(xì)胞樣本的前處理
閱讀：492 發(fā)布時(shí)間：2024-8-14一,、勻漿介質(zhì)
一般采用0.05 mol/L Tris-HCl, pH 7.4 磷酸鹽緩沖液(PBS),客戶可根據(jù)樣本及測定指標(biāo)的情況自行設(shè)定濃度,目的是保持樣本的等滲環(huán)境。
二,、細(xì)胞樣本的前處理:
1,、細(xì)胞沉淀的收集：
① 懸浮細(xì)胞: 對于懸浮培養(yǎng)的細(xì)胞，直接通過離心收集細(xì)胞沉淀,，將培養(yǎng)液在室溫條件下1000轉(zhuǎn)/分,離心10分鐘,，棄上清留細(xì)胞沉淀。
② 貼壁細(xì)胞: 對于貼壁培養(yǎng)的細(xì)胞,，用胰酶將細(xì)胞消化下來,，或用細(xì)胞刮將細(xì)胞刮下來，將培養(yǎng)液在室溫條件下1000轉(zhuǎn)/分,離心10分鐘,，棄上清留細(xì)胞沉淀,。
我們一般建議客戶，細(xì)胞密度最好不要小于一百萬個(gè)/ml,。
2,、細(xì)胞沉淀的洗滌：
在細(xì)胞沉淀中加入0.5-1ml的PBS （等滲）， 輕輕顛倒混勻,，將培養(yǎng)液在室溫條件下1000轉(zhuǎn)/分,離心10分鐘,，棄上清留細(xì)胞沉淀。
重復(fù)上述操作反復(fù)洗滌1～2次,。
3,、勻漿的方式：手工勻漿，超聲破碎,裂解液裂解,反復(fù)凍融,。
① 手工勻漿：在細(xì)胞沉淀中加入一定量的PBS（PBS的加入量根據(jù)所測指標(biāo)的不同而有所改變,，一般加入0.5ml，細(xì)胞密度不小于一百萬個(gè)/ml）,，混勻,，將細(xì)胞懸浮于PBS中，用移液器將細(xì)胞懸浮液移至玻璃勻漿管中（2ml玻璃勻漿管）,，將玻璃勻漿管置于冰水混合物中,，手動(dòng)勻漿3分鐘，然后取破碎好的細(xì)胞懸浮液進(jìn)行測定,。
② 超聲破碎:
在細(xì)胞沉淀中加入一定量的PBS（PBS的加入量根據(jù)所測指標(biāo)的不同而有所改變,，一般加入0.5ml，細(xì)胞密度不小于一百萬個(gè)/ml）,，混勻,，將細(xì)胞懸浮于PBS中,，在冰水浴條件下進(jìn)行如下操作:
a、用超聲粉碎機(jī)進(jìn)行粉碎,，可用Soniprep150型超聲波發(fā)生器以振幅14微米超聲處理30秒使細(xì)胞破碎,，也可用國產(chǎn)超聲波發(fā)生儀，用400安培,，5秒/次,，間隙10秒反復(fù)3～5次。
b,、用超聲細(xì)胞破碎儀,，300W功率，每次超聲3～5秒,，間隔30秒,，重復(fù)4～5次。
③ 裂解液裂解
常用裂解液有SDS,、NP-40,、TritonX-100,這三種去垢劑的作用是不同的，或者說作用力量強(qiáng)弱不同,。
1,、SDS屬于離子型去垢劑，最厲害,，基本可以把細(xì)胞充分破掉,，DNA會(huì)釋放出來，裂解液變得很粘稠,。
2,、NP-40是很溫和的去垢劑，1%濃度的基本可以破壞掉胞膜,，而對核膜破壞的作用弱,，結(jié)合特定的buffer可以獲得胞漿蛋白,。
3,、TritonX-100的能力介于NP40和SDS之間，偏向于NP40,，也是常用的細(xì)胞裂解液成分之一,，在保護(hù)蛋白活性方面有一定作用（SDS基本會(huì)使蛋白變性失活）。
去垢劑屬性只是一方面,，buffer,、配比、濃度,、提取方法和材料處理也都是關(guān)鍵因素
由于很多裂解液都是蛋白變性劑,對酶活力的測定有一定的影響,一般不推薦用裂解液進(jìn)行裂解,。
④ 反復(fù)凍融:
在細(xì)胞沉淀中加入一定量的PBS（PBS的加入量根據(jù)所測指標(biāo)的不同而有所改變,，一般加入0.5ml，細(xì)胞密度不小于一百萬個(gè)/ml）,，混勻,，將細(xì)胞懸浮于PBS中，放低溫冰箱中結(jié)冰,，溶解,，再結(jié)冰，再溶解,，反復(fù)3次左右）,。
由于反復(fù)凍融對酶活力影響較大,一般不推薦使用