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表 1. 片段化 / 末端修復(fù) /dA 尾反應(yīng)體系

3. 吹打或振蕩混勻，并短暫離心將反應(yīng)液離心至管底,。
4. 按下表設(shè)置反應(yīng)程序(熱蓋設(shè)置為 82℃)  ,，將上述 PCR 管置于 PCR 儀中反應(yīng)。

表 2. 片段化 / 末端修復(fù) / 加 dA 尾反應(yīng)程序

接頭連接(Adapter Ligation)
1. 將所需試劑解凍后顛倒混勻,，置于冰上備用,。
2. 如下表所示配制反應(yīng)體系。

表 3. 接頭連接反應(yīng)體系(接頭詳細(xì)說(shuō)明見(jiàn)注意事項(xiàng) 二)

3,、吹打或振蕩混勻,，并短暫離心將反應(yīng)液離心至管底。
4,、將上述 PCR 管置于 PCR 儀中 22℃,，孵育 60min。
【注】：當(dāng)投入 DNA 量較低,，實(shí)驗(yàn)效果不理想時(shí),，可嘗試將連接時(shí)間延長(zhǎng)。

連接產(chǎn)物磁珠純化(Post Ligation Clean Up)
A. 產(chǎn)物純化操作步驟(必選)
1,、準(zhǔn)備工作：將 AMPure XP Beads 室溫平衡 30 min,。配制 80% 乙醇。
2,、吸取 48 μL AMPure XP Beads   (1 .2×,，Beads:DNA=1.2:1)  至接頭連接產(chǎn)物中，  渦旋混 勻或移液器吹打 10 次混勻,，室溫孵育 5 min,。
3、短暫離心并置于磁力架上,，待溶液澄清后(約 5 min),，棄上清,。
4、保持 PCR 管始終置于磁力架中,，加入 200 μL 新鮮配制的 80% 乙醇漂洗磁珠,，室溫孵育30 sec，棄上清,。
5,、重復(fù)步驟 4。
6,、保持 PCR 管始終置于磁力架中,，開(kāi)蓋干燥磁珠至剛出現(xiàn)龜裂(約 5 min)*。
7,、  
1)  如產(chǎn)物無(wú)需進(jìn)行片段分選，將 PCR 管從磁力架中取出,，磁珠 ( 無(wú)需用水洗脫 ) 直接用于文庫(kù)擴(kuò)增步驟反應(yīng),。

2)  如產(chǎn)物需進(jìn)行雙輪分選，  加入 52-102 μL Nuclease-free Water,，渦旋振蕩或輕輕吹打至充分混勻,，室溫靜置 5 min。將 PCR 管短暫離心并置于磁力架中靜置,，待溶液澄清 后(約 5 min)  ,，小心移取 50-100 μL 上清至新 PCR 管中，切勿觸碰磁珠(洗脫體積越大,，洗脫效率越高,，分選效果越好，詳細(xì)說(shuō)明見(jiàn)注意事項(xiàng)）,。
* 等待磁珠干燥過(guò)程中,，可配制 文庫(kù)擴(kuò)增步驟反應(yīng)體系。


B. 雙輪分選操作步驟(可選)
1,、準(zhǔn)備工作：將 AMPure XP Beads 室溫平衡 30 min,。配制 80% 乙醇。
2,、根據(jù) DNA 片段長(zhǎng)度要求,，參考表 4 向純化產(chǎn)物中加入第一輪分選磁珠，渦旋混勻或移液 器吹打 10 次混勻,。

表 4 文庫(kù)雙篩對(duì)應(yīng)磁珠體積參照表

【注】：表中“0.7×"表示樣品 DNA 體積的 0.7 倍,。如文庫(kù)插入片段長(zhǎng)度為 200 bp，樣品 DNA 體積為 100 μL,，則第一輪分選磁珠使用體積為 0.70×100 μL=70 μL,；第二輪分選磁珠使用體積為 0.25×100 μL=25 μL,。

3、室溫孵育 5min,。將 PCR 管短暫離心并置于磁力架中,，待溶液澄清后(約 5 min)  ，小 心轉(zhuǎn)移上清到干凈的 PCR 管中,。
4,、參考表 4 向上清中加入第二輪分選磁珠。渦旋混勻或移液器吹打 10 次混勻,，室溫靜置 5 min,。
5、 將 PCR 管短暫離心并置于磁力架中,，待溶液澄清后(約 5 min),，棄上清。
6,、保持 PCR 管始終處于磁力架中,，加入 200 μL 新鮮配制的 80% 乙醇漂洗磁珠，室溫孵育30 sec,，棄上清,。
7、重復(fù)步驟 6,。
8,、保持 PCR 管始終處于磁力架中，開(kāi)蓋干燥磁珠至剛出現(xiàn)龜裂(約 5 min)*,。
9,、將 PCR 管從磁力架中取出，磁珠 ( 無(wú)需用水洗脫 ) 直接用于文庫(kù)擴(kuò)增實(shí)驗(yàn),。
* 等待磁珠干燥過(guò)程中,，可配制 文庫(kù)擴(kuò)增步驟反應(yīng)體系。


文庫(kù)擴(kuò)增(Library Amplification)
1,、將表 5 所需試劑解凍后顛倒混勻,，置于冰上備用。
2,、如下表所示配制反應(yīng)體系,。

表 5 文庫(kù)擴(kuò)增反應(yīng)體系

【注】：  含有 Index 的 PCR 引物(i5 Prmier 和 i7 Primer)  信息詳見(jiàn) MichTM TLX Primer Kit(Catalog #NGS CD-0602-C)說(shuō)明。

3,、將配置好的 PCR 反應(yīng)液加入到 3.3.1 或 3.3.2 步驟完成后的含有磁珠的 PCR 管中,，  吹打或 振蕩混勻，并短暫離心。
4,、按下表設(shè)置反應(yīng)程序,，將上述 PCR 管置于 PCR 儀中反應(yīng)。

表 6 PCR 擴(kuò)增反應(yīng)程序

產(chǎn)物磁珠純化(Post Amplification Clean Up)
同：產(chǎn)物純化操作步驟,。使用 AMPure XP Beads(1×,，Beads:DNA=1:1)  純化文庫(kù)擴(kuò)增產(chǎn)物，  最后加適量 Nuclease-free water(20-50 μL)  進(jìn)行洗脫(產(chǎn)物如需保存請(qǐng) 使用 TE Buffer 洗脫),。

文庫(kù)質(zhì)量控制
通常情況下,，構(gòu)建好的文庫(kù)可通過(guò)濃度檢測(cè)和長(zhǎng)度分布檢測(cè)來(lái)進(jìn)行質(zhì)量評(píng)價(jià)，具體請(qǐng)參見(jiàn)：注意事項(xiàng)中的關(guān)于文庫(kù)質(zhì)檢,。

注意事項(xiàng)
關(guān)于操作
1,、請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
2,、使用前請(qǐng)將試劑盒各組分置于室溫解凍,。解凍后充分混勻，短暫離心后置于冰上待用,。
3,、混勻時(shí)請(qǐng)輕輕吹打或輕輕振蕩，劇烈振蕩可能會(huì)造成文庫(kù)產(chǎn)出下降,。
4、為避免樣品交叉污染,，推薦使用帶濾芯的一次性槍頭,。
5、推薦在帶熱蓋的 PCR 儀中進(jìn)行各步驟反應(yīng),，使用前應(yīng)預(yù)熱PCR 儀至反應(yīng)溫度附近,。
6、請(qǐng)?jiān)跐崈舻膶?shí)驗(yàn)環(huán)境下實(shí)驗(yàn),，避免污染,。

TLX Adapter for ILM 說(shuō)明
1、TLX Adapter for ILM 采用短接頭模式,。
2,、接頭濃度：15 μM; 直接用于相應(yīng)建庫(kù)試劑盒連接體系里即可。
3,、-20℃保存,，使用前提前融化，盡量低溫融化,，避免在超過(guò) 30℃的環(huán)境中融化,。
4、建庫(kù)推薦使用量：常規(guī) DNA 投入量 100-200 ng, 2 μL/rxns,；其他 DNA 投入量需要適當(dāng)調(diào) 整接頭使用量,。

關(guān)于磁珠純化與分選
1,、DNA 片段選擇步驟可在接頭連接后或文庫(kù)擴(kuò)增后進(jìn)行。
2,、當(dāng) Input DNA 質(zhì)量≥ 50 ng,，  建議在接頭連接后分選；  如 Input DNA 質(zhì)量<50 ng,，  可在 文庫(kù)擴(kuò)增后進(jìn)行分選,。
3、TLX Ligase Buffer 包含高濃度的 PEG,，對(duì)雙輪磁珠分選產(chǎn)生顯著影響,。因此，當(dāng)在接頭 連接后進(jìn)行片段選擇,，須先進(jìn)行純化步驟,，再進(jìn)行雙輪分選步驟；如在文庫(kù)擴(kuò)增后進(jìn)行片 段選擇,，可直接進(jìn)行雙輪磁珠分選步驟,。
4、磁珠使用前應(yīng)先平衡至室溫,，并混勻再使用,，否則會(huì)導(dǎo)致得率下降。
5,、80% 乙醇應(yīng)現(xiàn)用現(xiàn)配,，否則將影響回收效率。
6,、進(jìn)行片段選擇時(shí),， 初始樣品體積應(yīng)盡量≥ 100 μL， 初始樣本體積越大,， 片段選擇效果越好,。

關(guān)于文庫(kù)擴(kuò)增
1、文庫(kù)擴(kuò)增循環(huán)數(shù)與文庫(kù)產(chǎn)量和文庫(kù)質(zhì)量有直接關(guān)系,，請(qǐng)參照下表列舉的本試劑盒設(shè)置擴(kuò)增 循環(huán)數(shù),，并摸索合適的循環(huán)數(shù)。

表 1. 文庫(kù)擴(kuò)增循環(huán)數(shù)參照表

【注】：如文庫(kù)擴(kuò)增后需要做片段選擇時(shí)參照較高循環(huán)數(shù)擴(kuò)增,。

關(guān)于文庫(kù)質(zhì)檢
1,、通常情況下，構(gòu)建好的文庫(kù)可通過(guò)長(zhǎng)度分布檢測(cè)和濃度檢測(cè)來(lái)進(jìn)行質(zhì)量評(píng)價(jià),。
2,、文庫(kù)濃度檢測(cè)可使用：基于雙鏈 DNA 熒光染料的方法， 如 Qubit® 或 qPCR 絕對(duì)定量的方法。
3,、文庫(kù)長(zhǎng)度分布檢測(cè),，可通過(guò) Agilent Bioanalyzer 2100 等基于毛細(xì)管電泳或微控流原理的 設(shè)備進(jìn)行檢測(cè)。

運(yùn)輸與保存方法

-20℃運(yùn)輸,。
所有組分 -20° C 保存,，有效期 1 年。

MICH TLX DNA建庫(kù)試劑盒產(chǎn)品信息