化工儀器網(wǎng)
技術(shù)文章
細胞凍存應(yīng)該注意哪些事項,？
閱讀：1132 發(fā)布時間：2023-1-51、凍存細胞的效果好壞要看細胞復(fù)蘇時的存活率,。細胞凍存時,，細胞內(nèi)部會產(chǎn)生晶體，水凝固形成的高濃度溶質(zhì)會對細胞產(chǎn)生損傷,，所以在凍存過程中要盡可能降低晶體的產(chǎn)生,。為了提高復(fù)蘇存活率，可通過以下方法完成：
a.降溫的速度不能太快,，讓細胞內(nèi)的水分緩慢離開細胞,；
b.在低溫環(huán)境下凍存細胞可以降低高濃度鹽對細胞中蛋白質(zhì)的影響；
c.凍存試劑要采用親水的低溫保護劑,；
d.復(fù)蘇時的速度要快,，這樣可以減少細胞內(nèi)部冰晶溶解時產(chǎn)生的某些可溶性成分。
2,、凍存細胞是為了留種,，所以要選擇高濃度的細胞量進行凍存,。正常情況下，當(dāng)細胞濃度達到1*105/ml時即可凍存,，具體是多少量主要根據(jù)個人觀察,。
3、二甲基亞砜（DMSO)因為穿透細胞的能力較強,，因此作為常用的凍存劑,，也可以叫做細胞保護劑加入到細胞懸液中。網(wǎng)上有些分享說道,，如果選用DMSO,，整個細胞懸液的制作過程都要在4℃環(huán)境下進行。本人采用過這種方法凍存過A549和某一原代細胞,，發(fā)現(xiàn)A549復(fù)蘇存活率和正常凍存的過程相比并沒有明顯區(qū)別,，而原代細胞的接種率確實有所上升，可能是因為是A549細胞比較皮實,，這種方法更適用于比較脆弱的細胞吧。
4,、凍存液比例一般是培養(yǎng)基：血清：DMSO=7:2:1或5:4:1,；動物種屬的原代細胞凍存液可采用的比例是培養(yǎng)基：血清：DMSO=0:9:1，即直接用血清重懸細胞再加入DMSO,，盡管如此,，原代細胞的復(fù)蘇成活率還是很低。
5,、有文獻表明,，細胞以l℃/min的速度冷凍存活率最髙，因為這一速度可以很好的控制細胞內(nèi)部晶體的產(chǎn)生,。我們實際操作不可能將速度控制的這么精確,，目前慣用的就是4℃30min、-20℃1h30min,、-80℃2h后轉(zhuǎn)入液氮中,。
6、正常情況下,，經(jīng)過-20℃1h30min這一步后,，凍存管內(nèi)的細胞已經(jīng)處于凝固狀態(tài)，如果此時凍存管內(nèi)還是液體,，很可能是DMSO或冰箱冷凍功能出現(xiàn)了問題,。如若遇到這種情況，不能因為時間到了,，就把把液體狀態(tài)的凍存管放置到液氮中,，可以適當(dāng)延長在-20℃環(huán)境下的冷凍時間30-60分鐘,，直至凍存液凝固后再放到液氮中。
7,、凍存記錄要表明細胞的種類,、凍存之前的狀態(tài)和大致數(shù)量、凍存時間和操作者,。
8,、液氮內(nèi)的細胞凍存最長時間不要超過半年，凍存在液氮中的細胞應(yīng)一段時間內(nèi)進行更替,。一個細胞系在培養(yǎng)一個月后,，可復(fù)蘇一管新的細胞確保其質(zhì)量沒有發(fā)生太大變化，傳代幾次后,，再凍存留種,。
9、細胞復(fù)蘇時,，為保證獲得較高的存活率和接種率,，應(yīng)盡可能的快速完成復(fù)蘇，以避免在升溫過程中細胞內(nèi)部晶體的產(chǎn)生,。書面介紹的復(fù)蘇溫度是37℃-42℃,，但是本人在實際操作中發(fā)現(xiàn)40℃環(huán)境下復(fù)蘇。
10,、復(fù)蘇時的凍存管一定要密封好,，以免管內(nèi)外溫度和壓力不同導(dǎo)致凍存管炸裂。
11,、復(fù)蘇時使用的培養(yǎng)基和凍存時使用的培養(yǎng)基中的血清盡量保證同一批次,。
12、DMSO快速稀釋會對細胞造成滲透性損傷,，使存活率下降50%,。對于DMSO凍存的細胞，復(fù)蘇后應(yīng)緩慢稀釋成細胞懸液：
1.凍存液：培養(yǎng)基=1:1稀釋成細胞懸液后離心,，然后重懸至培養(yǎng)皿中培養(yǎng),，隔天換液。
2.凍存液：培養(yǎng)基=1:10稀釋成細胞懸液,，不用離心,，直接放置到培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)2-4小時后，換液,。上述兩種方法都是比較常用的細胞復(fù)蘇方法,，后者更適用于原代細胞或比較難養(yǎng)的細胞。