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本生詳述ELISA操作常見的一些問題
ELISA方法被廣泛應(yīng)用于各種抗原和抗體測定。但ELISA測定中影響因素較多,,而且其操作中有一定的技術(shù)要求,在檢測過程中除正常反應(yīng)外,,有時(shí)常見到一些錯(cuò)誤的結(jié)果,。引起ELISA測定錯(cuò)誤結(jié)果的原因主要有:①標(biāo)本因素;②試劑因素;③操作因素。下面就一些常見ELISA操作過程中的問題一一分析,。
1.樣品稀釋
酶聯(lián)免疫反應(yīng)是一種敏感性很高的反應(yīng),,如果血清不稀釋,不可避免會(huì)產(chǎn)生很強(qiáng)的非特異性反應(yīng),,出現(xiàn)假陽性,。因此,國外檢測血清抗體的試劑盒,,均規(guī)定將血清稀釋至適當(dāng)?shù)谋稊?shù),,以降低非特異性反應(yīng),使特異性的抗原抗體反應(yīng)充分體現(xiàn)出來,。一般產(chǎn)品的樣品稀釋倍數(shù)均通過大量試驗(yàn)確定,,以保證試驗(yàn)的靈敏度和特異性。但是,,有些用戶未能嚴(yán)格按使用說明書操作,,如某些產(chǎn)品應(yīng)取10μl樣品進(jìn)行稀釋,個(gè)別用戶取5μl甚至1μl樣品進(jìn)行稀釋,,由于吸嘴上不可避免地沾有樣品以及微量移液器的精度不夠,,因此造成樣品稀釋倍數(shù)不準(zhǔn)確,檢測結(jié)果出現(xiàn)問題,。
2.試劑盒平衡
試劑盒中所有試劑和板條均應(yīng)在試驗(yàn)前平衡至室溫(約25℃),,一般需在室溫放置20~30分鐘以上。平衡時(shí)間太短會(huì)造成試劑混勻不夠,,樣品孵育時(shí)間相對(duì)縮短,,ELISA反應(yīng)不夠充分。冬季室溫低,,可將試劑盒置37℃溫箱20分鐘,。
3.樣品和試劑的混勻
稀釋前、后的樣品必須充分混勻,,所有試劑在加樣前也須搖勻,,以保證試驗(yàn)的均一性。
4.加樣
在現(xiàn)在的ELISA商品試劑盒中,必然有使用微量加樣器加入樣本的步驟,。注意的關(guān)鍵點(diǎn)是:加樣不可太快,,要避免加在孔壁上部,不可濺出和產(chǎn)生氣泡,。加樣太快,,無法保證微量加樣的準(zhǔn)確性和均一性。加在孔壁上部的非包被區(qū),,易導(dǎo)致非特異吸附,。濺出會(huì)對(duì)鄰近孔產(chǎn)生污染。出現(xiàn)氣泡則反應(yīng)液界面有差異,。所以,,有時(shí)候一份標(biāo)本用相同的試劑盒這次測定為陽性,下次測定為陰性,,往往就是上述加樣及試劑的錯(cuò)誤所致,。
5.溫育
溫育是ELISA測定中影響測定成敗z為關(guān)鍵的一個(gè)因素。ELISA作為一種固相免疫測定,,抗原抗體的結(jié)合反應(yīng)在固相上進(jìn)行,,要使液相中的抗原或抗體與固相上的特異抗體或抗原*結(jié)合,必須在一定的溫度條件下反應(yīng)一定的時(shí)間,。溫育所需時(shí)間與溫度成反比,,即溫度越高,則所需時(shí)間相對(duì)較短,。z為常用的溫育溫度有37℃和室溫,,其次是43℃和2~8℃。一些操作者,,擅自改變說明書操作,使用自己喜歡的溫育時(shí)間和溫育溫度,,這樣造成一些不必要的麻煩,。因?yàn)椋煌噭┖杏胁煌臏赜龝r(shí)間和溫育溫度的選擇,,隨意更改溫育時(shí)間或者溫育溫度將導(dǎo)致試驗(yàn)結(jié)果出現(xiàn)偏差,。
6.洗板
固相免疫測定技術(shù)是一種非均相免疫測定技術(shù),需以洗滌操作將特異結(jié)合于固相的抗原或抗體與反應(yīng)溫育過程中吸附的非特異成份分離開來,,以保證ELISA測定的特異性,。洗板對(duì)于ELISA測定來說,也是極其關(guān)鍵的一步,。洗液盡量不要溢出孔外;加洗液后要靜置1分鐘,,甩去板孔中洗液后,一定要大力拍干;及時(shí)更換吸水紙,尤其是拍過酶標(biāo)記物的吸水紙一定要棄去,,否則可能影響試驗(yàn)結(jié)果,。
7.邊緣效應(yīng)
使用96孔板的ELISA測定中,常發(fā)現(xiàn)有“邊緣效應(yīng)”,,即外周孔顯色較中心孔深,。經(jīng)研究證實(shí)在溫育中的熱力學(xué)梯度可能是根本原因之所。聚苯乙xi本身為不良熱導(dǎo)體,,在實(shí)驗(yàn)室的常規(guī)ELISA測定中,,將板從室溫(通常在25℃左右)置于37℃溫箱,板也升溫時(shí),,在外周孔與中心孔之間可能存在一熱力學(xué)梯度,。因此使用水浴或在將反應(yīng)溶液加入至板孔中時(shí),將板和溶液均加熱至溫育溫度(如37℃),,就可以很容易地排除“邊緣效應(yīng)”,,并且可提高測定的重復(fù)性。
8.顯色
顯色一定要控制時(shí)間,根據(jù)試劑盒說明操作即可,。一般來說,,顯色時(shí)間過短,結(jié)果偏低;顯色時(shí)間過長,,空白增高或者非特異性顯色增加,。
9.比色
比色要注意波長的選擇。以TMB為底物和以O(shè)PD為底物的試劑盒均有使用,,而前者比色波長為450nm,,后者為492nm,濾光片需根據(jù)要求隨時(shí)更換,。因此,,容易出現(xiàn)濾光片錯(cuò)用的問題。
其次,,單波長或雙波長比色選擇的問題,。所謂的單波長比色即是通常的以對(duì)顯色具有z大吸收的波長如450nm或492nm進(jìn)行比色測定;而雙波長雙色則酶標(biāo)儀在敏感波長如450nm和非敏感波長如630nm下各測定一次,敏感波上下的吸光度測定值為樣本測定酶反應(yīng)特異顯色的吸光度與板孔上指紋,、刮痕,、灰塵等臟物所致的吸光度之和;非敏感波長下測定即改變波長至一定值,使得樣本測定酶反應(yīng)特異顯色的吸光度值為零,,此時(shí)測得的吸光度即為臟物的吸光度值,。
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