如何科學正確地使用凍存管呢,？

　　凍存管的使用是一門學問,，并不是打開液氮罐、放入凍存管,、關上液氮罐這樣簡單的三部曲可以完成的,。科學正確地使用凍存管,，可以避免樣本的損失,，并保護試驗人員的安全。

　　凍存管有IATA航空運輸協(xié)會標準測試證書,，常規(guī)儲存細胞培養(yǎng)物,，組織樣品,，微生物樣品(如病毒，細菌,，酵母,，真菌，孢子等),，人源或動物源其它生物樣品(如血液,，血清,，精液,，抗體，RNA, DNA和蛋白樣本),，不適合存儲再生醫(yī)學樣本,。

　　冷凍步驟:

　　用預熱的PBS溶液洗滌細胞，吸取溶液,，含有胰蛋白酶和EDTA的溶液覆蓋細胞(薄薄的液層足夠,，胰蛋白酶和EDTA的濃度需要根據(jù)細胞系確定)。

　　37℃孵育細胞3-5分鐘,。

　　細胞從底部脫離之后,，終止孵育，加入含有血清的培養(yǎng)基,，用移液器輕輕地懸浮細胞,。

　　離心細胞懸液(500 x g, 5分鐘),，用含有血清的培養(yǎng)基重新懸浮。

　　細胞計數(shù),。

　　離心細胞懸液(500 x g, 5分鐘)，去除上清液,，用適量體積的含有血清的培養(yǎng)基重新懸浮細胞,。

　　以1:1體積比混合細胞和凍存液(60%培養(yǎng)基，20%胎牛血清,，20% DMSO),，然后轉(zhuǎn)移到凍存管中。凍存的細胞密度為 1-5×106 個/毫升,。

　　含有細胞的凍存管建議以−1 K / min 的速率降溫,，可以將凍存管置于−70℃含有異丙醇的容器中。如果凍存管存儲其他樣品,，可以直接放置在−20℃,，−70℃或者液氮的氣相。為了確保樣品冷凍均勻,，4 mL和5 mL的凍存管需要先置于在−20℃冰箱過夜,，然后再轉(zhuǎn)移到−70℃或者液氮的氣相,。

　　然后轉(zhuǎn)移凍存管到液氮罐。為了避免污染(如支原體)和安全考慮,，請將凍存管置于液氮的氣相,，切勿置于液相。

　　解凍步驟:

　　從液氮罐取出凍存的細胞后立即置于37℃水浴搖晃Cryo.sTM凍存管1-2分鐘,。解凍過程需要越快越好,。

　　轉(zhuǎn)移解凍的細胞于15 mL離心管，立即用大量的含有血清的細胞培養(yǎng)基混勻,。

　　500 x g離心細胞5 分鐘,，去除上清液，用適量的含有血清的細胞培養(yǎng)基重新懸浮細胞,，然后轉(zhuǎn)移到細胞培養(yǎng)瓶,。

　　按照建議的細胞濃度接種。

　　接下來的12小時細胞進入靜默期,。

　　間隔24小時和48小時更換培養(yǎng)基

　　如果細胞感染了病毒,，也可以參考以上步驟進行冷凍存儲和解凍的操作。

　　凍存管安全操作建議

　　凍存管用來存儲樣品,，只能置于液氮氣相或冰箱,。禁止凍存管浸沒于液氮液相，否則液氮可能滲入凍存管,。因此,，解凍時，蒸發(fā)的液氮產(chǎn)生高壓力,，終導致凍存管炸裂,，并且還將導致感染物質(zhì)釋放。

　　因此,，操作凍存管時需要佩戴合適的個人安全防護措施,，如穿戴安全護服、佩戴護目鏡,、在安全櫥操作,。

　　進行冷凍保存時，凍存管需要緩慢地降溫至冷凍溫度,。如果不是緩慢地降溫到冷凍溫度,，將導致冰塞形成(如在凍存管頂部)，冰塞將阻礙液體形成凝固,，將導致高壓力危險和后續(xù)的爆管風險,。