實驗方法原理:

　　實時熒光定量PCR技術,，是指在PCR反應體系中加入熒光基團,，利用熒光信號積累實時監(jiān)測整個PCR進程,，后通過標準曲線對未知模板進行定量分析的方法,。

　　儀器,、耗材:

　　離心管

　　離心機

　　風光光度計

　　電泳槽

　　凝膠板

　　Realtime PCR儀

　　實驗步驟:

　　一,、 樣品RNA的抽提

　　1. 取凍存已裂解的細胞，室溫放置5分鐘使其*溶解,。

　　二,、 RNA質量檢測

　　1. 紫外吸收法測定

　　先用稀釋用的TE溶液將分光光度計調零。然后取少量RNA溶液用TE稀釋(1:100)后,，讀取其在分光光度計260nm和280nm處的吸收值,，測定RNA溶液 濃度和純度。

　　(1)濃度測定

　　A260下讀值為1表示40 ug RNA/ml,。樣品RNA濃度(μg/ml)計算公式為：A260 x 稀釋倍數(shù) x 40 ug/ml,。具體計算如下：

　　RNA溶于40 ul DEPC水中，取5 ul,，1:100稀釋至495 ul的TE中,，測得A260 = 0.21

　　RNA 濃度= 0.21 x 100 x 40 ug/ml = 840 ug/ml 或 0.84 ug/ul

　　取5 ul用來測量以后，剩余樣品RNA為35 ul,，剩余RNA總量為：

　　35 ul x 0.84 ug/ul = 29.4 ug

　　(2)純度檢測

　　RNA溶液的A260/A280的比值即為RNA純度,，比值范圍1.8到2.1。

　　2. 變性瓊脂糖凝膠電泳測定

　　(1)制膠

　　三,、樣品cDNA合成

　　四,、 梯度稀釋的標準品及待測樣品的管家基因(β-actin)實時定量PCR

　　五、 制備用于繪制梯度稀釋標準曲線的DNA模板

　　六,、 待測樣品的待測基因實時定量PCR

　　1. 所有cDNA樣品分別配置實時定量 PCR反應體系,。

　　2. 體系配置如下：

　　序號 反應物 劑量

　　1 SYBR Green 1 染料 10 ul

　　2 上游引物 1 ul

　　3 下游引物 1 ul

　　4 dNTP 1 ul

　　5 Taq聚合酶 2 ul

　　6 待測樣品cDNA 5 ul

　　7 ddH2O 30 ul

　　8 總體積 50 ul

　　輕彈管底將溶液混合，6 000 rpm短暫離心,。

　　(3)將配制好的PCR反應溶液置于Realtime PCR儀上進行PCR擴增反應,。反應條件為：93℃ 2分鐘預變性，然后按93℃ 1分鐘,，55℃1分鐘,，72℃1分鐘，共40做個循環(huán),，后72℃7分鐘延伸,。

　　七、 實時定量PCR使用引物列表

　　引物設計軟件：Primer Premier 5.0，并遵循以下原則：引物與模板的序列緊密互補;引物與引物之間避免形成穩(wěn)定的二聚體或發(fā)夾結構;引物不在模板的非目的位點引發(fā)DNA 聚合反應(即錯配),。

　　八,、電泳

       各樣品的目的基因和管家基因分別進行Realtime PCR反應。PCR產物與 DNA Ladder在2％瓊脂糖凝膠電泳,，GoldView染色,，檢測PCR產物是否為單一特異性擴增條帶。