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古典豬瘟病毒通用型試劑盒

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更新時間:2022/11/09 09:17:33瀏覽次數:1344

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產品簡介

純度 99% 供貨周期 現貨
規(guī)格 50T 應用領域 醫(yī)療衛(wèi)生,化工,生物產業(yè),石油
主要用途 病毒檢測
?古典豬瘟病毒通用型試劑盒(實時熒光PCR法)?

本試劑盒針對古典豬瘟病毒的高度保守區(qū)域設計特異性引物和探針,,在反應體系中含古典豬瘟病毒基因組模板的情況下,PCR反應得以進行并釋放熒光信號,。利用熒光定量PCR儀對PCR過程中相應通道信號進行實時監(jiān)測和輸出,實現檢測結果的定性分析,。

詳細介紹

古典豬瘟病毒通用型試劑盒(實時熒光PCR法)

【產品名稱】

通用名稱: 古典豬瘟病毒通用型試劑盒(實時熒光PCR法)


【包裝規(guī)格】 25T/盒 & 50T/盒

【預期用途】

本試劑盒適用于古典豬瘟病毒檢測,,可用于臨床古典豬瘟病毒感染的輔助診斷,,但不作確診使用。

【檢驗原理】

古典豬瘟病毒通用型試劑盒(實時熒光PCR法)

本試劑盒針對古典豬瘟病毒的高度保守區(qū)域設計特異性引物和探針,,在反應體系中含古典豬瘟病毒基因組模板的情況下,,PCR反應得以進行并釋放熒光信號。利用熒光定量PCR儀對PCR過程中相應通道信號進行實時監(jiān)測和輸出,,實現檢測結果的定性分析,。

【主要組成成份】

序號

組成

25T/盒

50T/盒

1

CSFV RT-PCR反應液

375 μL×1管

750 μL×1管

2

CSFV逆轉錄酶

50 μL×1管

100 μL×1管

3

CSFV Taq酶

75 μL×1管

150 μL×1管

4

CSFV陽性對照

40 μL×1管

40 μL×1管

5

CSFV陰性對照

40 μL×1管

40 μL×1管

6

說明書

1份

1份

注:陰性對照為豬基因組DNA,陽性對照為失去活性的古典豬瘟病毒cDNA,。

【儲存條件及有效期】避光-20℃以下保存,,避免反復凍融,有效期12個月,。

【適用儀器】ABI 系列,、Bio-Rad系列、Agilent Stratagene MX系列 ,、Roche LightCycler R480,、Cepheid SmartCycler、Rotor-Gene系列,、杭州博日系列等多通道實時熒光定量PCR儀,。

【樣本要求】

1.血液或血清樣品:使用無菌注射液抽取樣品置于離心管中待檢。

2.肌肉或內臟樣品:取少量樣品(2~3克)于研缽或勻漿器中研磨,,然后將研磨勻漿轉入無菌離心管中,,3000rpm/min 離心10分鐘取上清待檢。

3.應避免標本間交叉污染,。

4.標本收集后可立即檢測,;若不能立即檢測,可置于2~8冷藏過夜保存,;如需長期保存,,標本應凍存于-80以下,避免反復凍,。

【檢驗方法】

1. 試劑準備(試劑準備區(qū))

(1)從冰箱中取出試劑盒, 從試劑盒中取出實驗所需試劑,充分融化混勻并瞬時離心以去除管壁附著液體,。

(2)核算當次實驗所需要的反應數(n),并根據如下表所示反應體系計算當次實驗所需要的各種試劑量,。

n =陰性對照數(1T)+陽性對照數(1T)+誤差預留量(1T)+樣本數

單反液配制表(每份)

RT-PCR反應液

15.0 μL

逆轉錄酶

2.0 μL

Taq酶

3.0 μL

(3)在無菌離心管中加入上述試劑,,充分混勻后瞬時離心。按照20 μL/管分裝量將試劑分裝至PCR反應管,。

2.樣本準備(樣本處理區(qū))

用QIAGEN,、Roche公司RNA提取試劑盒提取RNA,具體操作按照其試劑盒說明書操作,。

3.加樣

在上述制備好的PCR反應樣本管中分別加入處理好的待測標本RNA各5 μl,、終體積25 μl/管,,蓋好PCR反應蓋混勻后瞬時低速離心,轉移到PCR儀器上,。陰性對照和陽性對照管則各加5 μL試劑盒自帶的陰性對照或陽性對照品,,終體積為25 μl/管,蓋好PCR反應蓋混勻后瞬時低速離心,,轉移到PCR儀器上,。

4. PCR(PCR擴增區(qū))

(1)取樣本處理區(qū)準備好的PCR反應管,放置在實時熒光定量PCR儀樣品槽相應位置,,并記錄放置順序,。

(2)按下表設置儀器核酸擴增相關參數進行PCR擴增。


反應體積

25 μL

通道選擇

FAM通道采集古典豬瘟病毒熒光信號

PCR

反應

條件

步驟

條件

循環(huán)數

反轉錄

   42℃:10分鐘(min)

1

預變性

95℃:3分鐘(min)

1

預擴增

95℃:5秒(s)

5

55℃:40秒(s)

PCR擴增

95℃:5秒(s)

40

55℃:40秒(s)

(此階段結束時采集熒光信號)

注:ABI系列熒光PCR儀在設置時不選ROX校正,,設置淬滅基團選擇None,。

【參考值(參考范圍)】

1.試劑盒有效性判定:

(1)陽性對照:有典型S型擴增曲線或Ct值≤35。

(2)陰性對照:Ct值>38或無Ct值,,線形為直線或輕微斜線,,無指數增長期。

2.標本結果判定:

(1)陽性:標本檢測結果Ct值≤35或有明顯指數增長期,。

(2)可疑:標本檢測結果Ct值在35~38范圍內,。此時應對標本進行重復檢測,如重復實驗結果Ct值仍在35~38范圍內,,有明顯指數增長期,,則判定為陽性,否則為陰性,。

(3)陰性:標本檢測結果Ct值>38或無Ct值,。

【檢驗結果的解釋】

通道及檢測結果

標本檢測結果解釋

FAM

陽性(+)

標本中檢出古典豬瘟病毒RNA

陰性(-)

標本中未檢出古典豬瘟病毒RNA

【檢驗方法的局限性】

  • 當檢測樣本中被檢核酸濃度低于本試劑盒的低檢出*可能會發(fā)生假陰性的結果。

  • 被檢樣本在采集,、運輸,、儲存以及處理過程中操作方式不當容易造成RNA降解而產生假陰性結果。

  • 樣本在采集,、運輸,、儲存以及處理過程中發(fā)生交叉污染,則容易得到假陽性結果,。

【產品性能指標】 產品的低檢出限為102 Copies/mL,,產品CV值≤5%。

【注意事項】

  • 整個檢測過程應嚴格按照本說明書要求分別在試劑準備區(qū),、樣本處理區(qū)和PCR擴增區(qū)進行操作,,各區(qū)實驗服、儀器、耗材應獨立使用,,不能混用,;實驗用吸頭采用帶濾芯吸頭,;樣本處理區(qū)應配有生物安全柜,,樣本處理在生物安全柜中進行操作;三個區(qū)應該配有紫外線殺菌裝置,。

  • 為避免RNA降解,,樣本處理過程應在0-4℃條件下操作,且完成實驗后立即上機檢測,;樣本處理過程中使用的器具耗材應經過無核酶處理,。

  • 每次實驗應該設置陰、陽性對照,。

  • 試劑盒所有試劑在使用前應該在常溫下充分融化混勻,,并應瞬時離心。

  • 試劑盒內所配陰性和陽性對照在次使用前應全部轉移至標本準備區(qū),,并單獨存放,。

  • 為防止熒光干擾,應避免裸手直接接觸PCR反應管,,并應避免在PCR反應管上進行任何標記,。

  • 儀器擴增相關參數應按照本說明書相關要求進行設置;不同批號試劑不能混用,。

  • ABI系列熒光定量PCR儀參數設置中不選ROX校正,,淬滅基因選擇None。

  • 實驗過程中產品的廢棄物應該進行無害化處理后方可丟棄,。



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