詳細介紹
商品屬性:
產(chǎn)品名稱 | 規(guī)格 | 貨號 |
平板涂布玻璃珠(無菌) | 1000粒 | A-Hc2237 |
保存條件:室溫干燥保存
產(chǎn)品介紹:
平板涂布玻璃珠提供了一種高效快速的菌液(大腸桿菌,、酵母菌液等)涂布方法,。平板涂布玻璃珠(直徑4 mm)光滑均勻,,無菌包裝,,表面經(jīng)特殊工藝處理,不殘留菌液,。與傳統(tǒng)方法比較,,使用平板涂布玻璃珠,菌液涂布更加均勻,,并能夠覆蓋傳統(tǒng)涂菌方法不能達到的平板邊緣,。同時,可實現(xiàn)多板同時涂布,,大大提高實驗效率,。平板涂布玻璃珠可經(jīng)反復滅菌,多次使用,。
特點:
1. 均勻:菌液涂布均勻,。
2. 高效:可實現(xiàn)多板同時涂布。
3. 經(jīng)濟:可反復滅菌,,多次使用,。
滅菌方法:
玻璃珠經(jīng)70%的乙醇洗滌后,高溫高壓滅菌,,晾干后使用,。
使用方法:
1. 向已加入菌液的固體瓊脂平板加入無菌玻璃珠數(shù)顆,如9 cm平板每板建議加10粒玻璃珠,。
2. 蓋好板蓋,,于超凈臺表面水平前后、左右各快速晃動平板約10 sec,,以達到更佳涂板效果,。
注意:當板蓋有冷凝水時,應倒掉或晾干板蓋上的冷凝水,,以防止涂板時污染平板,。如需同時涂布多板,可將加有玻璃珠的平板疊在一起,,同時晃動涂板,。
3. 待瓊脂表面菌液干燥時,倒出玻璃珠,,蓋好板蓋,,以備后續(xù)培養(yǎng)。
注意:平板涂布玻璃珠為無菌包裝,,請在無菌環(huán)境下使用。玻璃珠可反復滅菌,多次使用,。
PCR基本步驟及注意事項,?
一、實驗原理
PCR是體外人工選擇性擴增DNA的一種方法,,它類似于生物體內DNA的復制,。在生物體內DNA復制需要模板、引物,、DNA聚合酶,、DNA解旋酶、 dNTPs,;而體外PCR反應同樣需要類似的成分,,有模板、引物,、PCR Buffer,、Taq酶、dNTPs,。其中引物是人工設計的特定序列,,實現(xiàn)對特定位置的擴增;PCR Buffer提供一個反應的緩沖環(huán)境,;反應過程同生物體內一樣,,DNA雙鏈打開,引物結合模板,,延伸形成新鏈,。而這些過程在生物體內靠DNA解旋酶解鏈,而在體外在通過控制反應溫度實現(xiàn)的,。如常用94℃變性模板DNA打開雙鏈,,在退火溫度處引物結合到模板上,最后在72℃完成延伸,,并反復重復此過程即可實現(xiàn)對特定片段DNA的大量擴增,。到第三循環(huán)開始才產(chǎn)生出和靶DNA區(qū)段相同的DNA分子,進一步循環(huán)地產(chǎn)生出靶DNA區(qū)段的指數(shù)加倍,。
在擴增后期,由于產(chǎn)物積累,使原來呈指數(shù)擴增的反應變成平坦的曲線,產(chǎn)物不再隨循環(huán)數(shù)而明顯上升,這稱為平臺效應,。平臺期(Plateau)會使原先由于錯配而產(chǎn)生的低濃度非特異性產(chǎn)物繼續(xù)大量擴增,達到較高水平,。因此,,應適當調節(jié)循環(huán)次數(shù),在平臺期前結束反應,, 減少非特異性產(chǎn)物,。到達平臺期(Plateau)所需循環(huán)次數(shù)取決于樣品中模板的拷貝,。
二、主要的成分
1.模板可以是多種形式,,主要包括基因組DNA,、質粒DNA、攜帶病毒的基因組DNA,、PCR產(chǎn)物,,cDNA等,但不能為RNA,。對于不同類型的模板,,其主要不同在于預變性的時間以及模板的量。一般對于大的基因組DNA預變性時間10min足夠,,質粒DNA2min,、攜帶病毒的基因組DNA預變性2min、PCR產(chǎn)物預變性2min即可,。
注意cDNA為單鏈DNA,,但仍可做PCR的模板,只不過在第一輪循環(huán)時只有一個引物結合,,合成另一條鏈,。從第二輪開始,兩個引物均與特異位點結合,,從而實現(xiàn)了與常規(guī)PCR的接軌,。而同作為單鏈的RNA卻不能進行PCR擴增,原因就在于實現(xiàn)PCR反應的是DNA聚合酶,,只能特意識別DNA鏈,。
2.對于模版的量來說,一般25ul體系DNA的質量為50—100ng,。對于基因組DNA由于其結構比較復雜,,提取的濃度也往往比較大,為防止?jié)舛冗^大對PCR造成影響,,故需對提取的DNA進行梯度稀釋,。否則濃度過高則可能會引起非特異性擴增。對于質粒及PCR產(chǎn)物由于其結構簡單,,且提取濃度一般較低,,則無需稀釋。
PCR實驗中應該注意的問題有哪些?
沒有ct值
檢測結果遇到?jīng)]有Ct值情況,排查是否有以下問題:
1,、循環(huán)數(shù)不夠(一般不超過45循環(huán),不僅背景值提高,定量也不準);
2,、PCR程序設置錯誤,檢測熒光信號的步驟有誤。一般SG法采用72℃延伸時采集,TaqMan法則一般在退火結束時或延伸時采集信號,另外熒光采集是否選中;
3,、引物或探針降解,??赏ㄟ^PAGE電泳檢測引物和探針是否降解;
4、模板量可能降解或上樣量不足(不超過500ng,根據(jù)試劑盒說明書即可), 對未知濃度的樣本應從系列稀釋樣本的最高濃度做起;如果發(fā)生模板降解,應考慮樣本準備中雜質的引入及反復凍融的情況,建議將模板樣本小量分裝儲備,避免反復凍融;
5,、引物探針是否合適(尤其是引物跨越內含子,以確保擴增基因組DNA;上下游引物Tm值超過4℃以上也會影響擴增),。
ct值過晚
在相對定量中, Ct值一般控制在15—25之間比較好,如果在絕對定量中, 對低拷貝數(shù)的樣品,Ct值會增大, 但是一般不宜超過40循環(huán), 否則定量不準確。
因此,判斷Ct值出現(xiàn)過晚是否屬于非正常情況, 需要根據(jù)具體實驗設計和目的進行,。
1、擴增效率低,。引物之間或者引物和探針的比例不合適, 需要進行優(yōu)化;引物或探針設計不合理, 需要重新設計;
2,、PCR程序不合適, 改用三步法進行反應, 或者優(yōu)化退火/延伸溫度, 可以適當降低退火溫度; 退火/延伸時間短(可以在推薦的時間條件下延長10s);
3、MgCl2濃度不合適,增加鎂離子濃度等,。PCR各種反應成分的降解或加樣量的不足;
4,、PCR產(chǎn)物太長。PCR產(chǎn)物設計超過500bp;
5,、模板中存在抑制物,。用高純度模板進行PCR檢測或將模板進行稀釋。
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