公司產(chǎn)品僅供科研研究使用、不得用于臨床診斷！

描述：BCA 蛋白質(zhì)定量試劑盒(BCA Protein Assay Kit)是根 據(jù)目前世界上常用的蛋白濃度檢測方法之一－BCA （bicinchoninic acid）法改良研制而成,，該試劑盒具有蛋白 濃度測定的簡單性,，高穩(wěn)定性,，高靈敏度和高兼容性,。本試 劑盒的原理是蛋白質(zhì)分子中的肽鍵結(jié)構(gòu)在堿性環(huán)境下能與 Cu2+絡合生成絡合物，將 Cu2+還原成 Cu+,，而 BCA 試劑可 敏感特異地與 Cu+結(jié)合,，形成穩(wěn)定的有顏色的復合物，并在 562nm 處有最大光吸收值,，該復合物顏色深淺與蛋白質(zhì)濃度 成正比,，可根據(jù)吸收值的大小來測定蛋白的含量，1 小時內(nèi) 即可完成蛋白定量檢測,。本試劑盒含有牛血清白蛋白（BSA） 溶液作為蛋白質(zhì)標準溶液,，測定范圍為 25～2000 μg/ml。該 試劑盒可用于 20 次試管檢測或 200 次 ELISA 板檢測,。

操作方法
1. 標準品的稀釋：按下表將 BSA 進行稀釋,。
管號 PBS
BSA 體積
（來源）
BSA 終濃度
（μg/ml）
A 0 300 μl (母液) 2000
B 125 μl 375 μl (母液) 1500
C 325 μl 325 μl (母液) 1000
D 175 μl 175 μl (B 管) 750
E 325 μl 325 μl (C 管) 500
F 325 μl 325 μl (E 管) 250
G 325 μl 325 μl (F 管) 125
H 400 μl 100 μl (G 管) 25
I 400 μl 0 0
2. BCA 工作液的配置：根據(jù)樣品數(shù)量及測定方法,，將 BCA Reagent A 和 BCA Reagent B 按體積比 50:1充分混勻即可,。
注意：配制 BCA 工作液前請將 BCA Reagent A 混勻。
3. 標準比色杯測定方法
(1)吸取 0.1 ml 的各標準品和待測樣品置于合適的管中,。
(2)加入 2 ml BCA 工作液,，充分混勻。
(3)37℃孵育 30 min,，然后室溫靜置 10 min,。
(4)紫外分光光度計于 562 nm 處檢測吸光度。
(5)繪制標準曲線,。
(6)根據(jù)標準曲線計算出樣品的蛋白濃度,。
4. 微管測定方法
(1)分別取 25 μl 新鮮配制的 BSA 標準液和待測樣品，加入到 ELISA 反應板中,。
(2)每孔加入 200 μl BCA 工作液,，充分混勻,。
(3)37℃孵育 30 min，然后室溫靜置 10 min,。
(4)酶標儀于 562nm 處檢測吸光度,。
(5)繪制標準曲線。
(6)根據(jù)標準曲線計算出樣品的蛋白濃度,。
注意事項
1. 待測樣品濃度在 25~2000 μg/ml 的范圍內(nèi)具有良好的線性關(guān)系,。
2. BCA 工作液配制后 24 小時內(nèi)使用效果穩(wěn)定。
3. BCA 法測定蛋白濃度時,，吸光度會隨著時間的延長不斷加深,。并且顯色反應會因溫度升高而加快。如果濃度較低,，適合在較高溫度孵育,，或延長孵育時間。
4. 使用普通的分光光度計測定時,，需根據(jù)比色皿的最小檢測體積,，適當加大 BCA 工作液的用量，使其不小于最小檢測體積,，樣品和標準品的用量可相應按比例調(diào)整,。
5. 適用范圍

實例操作 按上述操作方法可得到如下標準工作曲線，該線性方程經(jīng)過 多次繪制,，系數(shù)均為 0.0001,，且 R 2 值均在 0.99~1 之間， 重復性好,，在計算蛋白濃度時可直接用該標準工作曲線進行 計算,。例如：在 562 nm 處檢測吸光值為 0.1，則此時 y 值 為 0.1,，代入方程 y=0.0001x 中,，可得蛋白濃度為 1000 μg/ml。

PCR 反應需要使用哪些試劑和設備,？

試劑:
模板DNA：PCR反應需要模板DNA,，如從細胞、組織,、血液中提取DNA等,；引物：PCR反應的兩個引物，分別與模板DNA的兩端配對擴增所需的特定區(qū)域,，引物也可以合成為TA克隆等過程中使用到的引物,；dNTPs：PCR反應中需要四種dNTPs，包括脫氧腺苷酸（dATP）,、脫氧胸苷酸（dCTP）,、脫氧鳥苷酸（dGTP）,、脫氧胞嘧啶酸（dTTP），用于細胞分裂,、DNA合成等生物學過程,，用于PCR擴增的模板DNA鏈的延伸和擴增；Taq DNA聚合酶：PCR反應需要的聚合酶,，一般使用Taq聚合酶,，還有一些其他種類的聚合酶如PFU、Phusion等,，用于擴增DNA鏈,；PCR buffer溶液：對PCR反應具有緩沖作用，調(diào)節(jié)反應pH,，硫代硫酸氫鹽SDS,、小分子有機化合物如甲醛，可增強PCR反應特異性,，從而提高反應效率,；酶切體系：PCR擴增往往涉及到重組、構(gòu)建和測序等等實驗步驟,，常常需要進行酶切操作,。MARK:一種分子量標準，用來判別DNA片段大小的工具,。DNA純化試劑盒：用于純化PCR反應產(chǎn)物,；
設備：
PCR儀：用于控制反應溫度，保證PCR反應時不同溫度環(huán)節(jié)的嚴格控制,；電泳槽：用于分離PCR擴增產(chǎn)物,；核酸提取儀：從組織樣本中全自動提取核酸。  這些試劑和設備在PCR分子生物學技術(shù)中均是,，只有在有序齊全的基礎上,，才能進行PCR反應并得出準確結(jié)果。

PCR相關(guān)基礎實驗：

PCR反應基本步驟一般的聚合酶鏈式反應由20到35個循環(huán)組成,，每個循環(huán)包括以下3個步驟：

一,、變性：

利用高溫（93-98℃）使雙鏈DNA分離,。高溫將連接兩條DNA鏈的氫鍵打斷,。在第一個循環(huán)之前，通常加熱長一些時間以確保模板和引物分離,，僅以單鏈形式存在,。該步驟時間1-2分鐘，接下來PCR儀就控制溫度進入循環(huán)階段,。

二,、退火或稱接合,復性：

在DNA雙鏈分離后,，降低溫度使得引物可以結(jié)合于單鏈DNA上。此階段的溫度通常低于引物熔點5℃,。錯誤的退火溫度可能導致引物不與模板結(jié)合或者錯誤地結(jié)合,。該步驟時間1-2分鐘。

三,、延伸：

DNA聚合酶由降溫時結(jié)合上的引物開始沿著DNA鏈合成互補鏈,。此階段的溫度依賴于DNA聚合酶。該步驟時間依賴于聚合酶以及需要合成的DNA片段長度,。傳統(tǒng)的Taq估計合成1000bp/min,、較新的Tbr（來自于嗜熱菌Thermus brockianus）約40秒、商業(yè)公司生產(chǎn)的融合型聚合酶僅需約10-15秒,。

PCR反應條件優(yōu)化：

1,、變性溫度和時間：

保證模板DNA解鏈是保證整個PCR擴增成功的關(guān)鍵。加熱90~95°C, 30~60s,，再復雜的DNA 分子也可變性為單鏈,。溫度過高或高溫持續(xù)時間過長，可對Taq酶活性和dNTP分子造成損害,。

2,、復性溫度和時間:

PCR擴增特異性取決于復性過程中引物與模板的結(jié)合。復性溫度越高,，產(chǎn)物特異性越高,。復性溫度越低，產(chǎn)物特異性越低,。需根據(jù)引物的Tm值具體設定,。

3、延伸溫度和時間:

一般位于Taq酶最適作用溫度70~75°C之間,。引物小于16個核苷酸時,，過高的延伸溫度不利于引物與模板的結(jié)合，可以緩慢升溫到70~75°C,。延伸反應時間,，可根據(jù)待擴增片段的長度而定，小于1kb, 1min足夠,；大于1kb需加長延伸時間,。Taq酶可根據(jù)1kb/min增加時間。這里需要注意,，延伸時間過長可能出現(xiàn)非特異擴增,。因此需要設置恰到好處的延伸時間。

4、循環(huán)數(shù):

其他參數(shù)選定后,，PCR循環(huán)次數(shù)主要取決于模板DNA的濃度,。理論上說20?25次循環(huán)后，PCR產(chǎn)物的積累即可達到最大值,，實際操作中由于每步反應的產(chǎn)率不可能達到100%,，因此不管模板濃度是多少，20~30次是比較合理的循環(huán)次數(shù),。循環(huán)次數(shù)越多,，非特異擴增增加。

公司正在出售的產(chǎn)品：