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實驗干貨，PCR反應常見問題分述
閱讀：1146 發(fā)布時間：2023-5-15聚合酶鏈式反應（PCR）是一種用于放大擴增特定的DNA片段的分子生物學技術,，它可看作是生物體外的特殊DNA復制，PCR的最大特點是能將微量的DNA大幅增加,。PCR技術的基本原理類似于DNA的天然復制過程,，其特異性依賴于與靶序列兩端互補的寡核苷酸引物。PCR反應常見問題分述如下：
1．假陰性,，不出現擴增條帶
PCR反應的關鍵環(huán)節(jié)有①模板核酸的制備,，②引物的質量與特異性，③酶的質量,， ④PCR循環(huán)條件,。尋找原因亦應針對上述環(huán)節(jié)進行分析研究。
模板：
①模板中含有雜蛋白質,，
②模板中含有Taq酶抑制劑,，
③模板中蛋白質沒有消化除凈，特別是染色體中的組蛋白,，
④在提取制備模板時丟失過多,，或吸入酚。
⑤模板核酸變性不徹di,。在酶和引物質量好時,，不出現擴增帶，極有可能是標本的消化處理,，模板核酸提取過程出了毛病,，因而要配制有效而穩(wěn)定的消化處理液，其程序亦應固定不宜隨意更改,。
酶失活：需更換新酶,，或新舊兩種酶同時使用，以分析是否因為酶的活性喪失或不夠而導致假陰性。需注意的是有時PCR時忘了加Taq酶或電泳時忘了加溴化乙錠,。
引物：引物質量,、引物的濃度、兩條引物的濃度是否對稱,，是PCR失敗或擴增條帶不理想,、容易彌散的常見原因。有些批號的引物合成質量有問題,，兩條引物一條濃度高,，一條濃度低，造成低效率的不對稱擴增,，對策為：
①選定一個好的引物合成單位,。
②引物的濃度不僅要看OD值，更要注重引物原液做瓊脂糖凝膠電泳,，一定要有引物條帶出現,，而且兩引物帶的亮度應大體一致，如一條引物有條帶,，一條引物無條帶,，此時做PCR有可能失敗，應和引物合成單位協(xié)商解決,。如一條引物亮度高,，一條亮度低，在稀釋引物時要平衡其濃度,。
③引物使用過程中應高濃度小量分裝保存，防止多次凍融或長期放冰箱冷藏部分,，導致引物變質降解失效,。
④引物設計不合理，如引物長度不夠,，引物之間形成二聚體等,。
Mg2+濃度：Mg2+離子濃度對PCR擴增效率影響很大，濃度過高可降低PCR擴增的特異性,，濃度過低則影響PCR擴增產量甚至使PCR擴增失敗而不出擴增條帶,。
反應體積的改變：通常進行PCR擴增采用的體積為20μl、30μl,、50μl或100μl,，應用多大體積進行PCR擴增，是根據科研和臨床檢測不同目的而設定,，在做小體積如20μl后,，再做大體積時，一定要重新摸索條件，否則容易失敗,。
物理原因：溫度對PCR擴增來說相當重要,。如果變性溫度低，變性時間短,，極有可能出現假陰性,；退火溫度過低，可導致非特異性擴增而降低特異性擴增效率,；退火溫度過高,，影響引物與模板的結合而降低PCR擴增效率。有時還有必要用標準的溫度計,，檢測一下PCR儀或水浴鍋內的變性,、退火和延伸溫度，這也是PCR失敗的原因之一,。
靶序列變異：如靶序列發(fā)生突變或缺失,，影響引物與模板特異性結合，或因靶序列某段缺失使引物與模板失去互補序列,，其PCR擴增是不會成功的,。
2．假陽性
引物設計不合適：選擇的擴增序列與非目的擴增序列有同源性，因而在進行PCR擴增時,，擴增出的PCR產物為非目的性的序列,。靶序列太短或引物太短，容易出現假陽性,。需重新設計引物,。
靶序列或擴增產物的交叉污染：這種污染有兩種原因：一是整個基因組或大片段的交叉污染，導致假陽性,。這種假陽性可用以下方法解決：
①操作時應小心輕柔,，防止將靶序列吸入加樣器內或濺出離心管外。
②除了酶及其他不耐高溫的物質外,，所有試劑或器材均應高壓消毒,。所用離心管及進樣槍頭均應一次性使用。
③必要時,，在加標本前,，反應管和試劑用紫外線照射，以破壞存在的核酸,。二是空氣中的小片段核酸污染,，這些小片段比靶序列短，但有一定的同源性,?？苫ハ嗥唇樱c引物互補后，可擴增出PCR產物,，而導致假陽性的產生,，可用巢式PCR方法來減輕或消除。
3．出現非特異性擴增帶
PCR擴增后出現的條帶與預計的大小不一致,，或大或小,，或者同時出現特異性擴增帶 與非特異性擴增帶。非特異性條帶的出現,，其原因：一是引物與靶序列不wan全互補,、或引物聚合形成二聚體。二是Mg2+離子濃度過高,、退火溫度過低,，及PCR循環(huán)次數過多有關。其次,，是酶的質和量,，往往一些來源的酶易出現非特異條帶而另一來源的酶則不出現，酶的量過多有時也會出現非特異性擴增,。其對策有：
①必要時,，重新設計引物。
②減低酶的量或調換另一來源的酶,。
③降低引物量,，適當增加模板量，減少循環(huán)次數,。
④適當提高退火溫度或采用二溫度點法(93℃變性,，65℃左右退火與延伸，也叫兩步法),。
4．出現片狀拖帶或涂抹帶
PCR擴增有時出現涂抹帶或片狀帶或地毯樣帶,。其原因往往由于酶的量過大或酶的質量差，dNTP濃度過高,，Mg2+濃度過高,，退火溫度過低,，循環(huán)次數過多引起,。其對策有：
①減少酶的量，或調換另一來源的酶,。
②減少dNTP的濃度,。
③適當降低Mg2+濃 度。
④增加模板量,，減少循環(huán)次數