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化學感受態(tài)細胞是常規(guī)克隆和亞克隆實驗應用較為合適的解決方案,。經氯化鈣處理,促進質粒DNA黏附于感受態(tài)細胞膜上,。將感受態(tài)細胞通過水浴熱激,,使細胞膜孔打開,從而質??梢赃M入,。
操作方法:(以下操作均按無菌條件的標準進行)
1、取感受態(tài)細胞置于冰浴中,,如需分裝可將剛融化細胞懸液分裝到無菌預冷的離心管中,,置于冰浴中。一次轉化感受態(tài)細胞的建議用量為50-100μl,,可以根據實際情況分裝使用,。應注意所用DNA體積不要超過感受態(tài)細胞懸液體積的十分之一。
以下實驗以100μl感受態(tài)細胞為例,。
2,、向感受態(tài)細胞懸液中加入目的DNA(50μl的感受態(tài)細胞能夠被1ng超螺旋質粒DNA所飽和),輕輕旋轉離心管以混勻內容物,,在冰浴中靜置30分鐘,。
3、將離心管置于42℃水浴中放置90秒,,然后快速將管轉移到冰浴中,,使細胞冷卻2-3分鐘,該過程不要搖動離心管,。
4,、向每個離心管中加入500μl無菌的SOC或LB培養(yǎng)基(不含抗生素),混勻后置于37℃搖床振蕩培養(yǎng)45分鐘(150轉/分鐘),,目的是使質粒上相關的抗性標記基因表達,,使菌體復蘇。
5,、將離心管內容物混勻,,吸取100μl已轉化的感受態(tài)細胞加到含相應抗生素的SOB或LB固體瓊脂培養(yǎng)基上,用無菌的彎頭玻棒輕輕的將細胞均勻涂開,。將平板置于室溫直至液體被吸收,,倒置平板,37℃培養(yǎng)12-16小時,。
注:涂布用量可根據具體實驗來調整,。如轉化的DNA總量較多,可取更少量轉化產物涂布平板,;反之,,如轉化的DNA總量較少,,可取200-300μl轉化產物涂布平板。如果預計的克隆較少,,可通過離心(4,000rpm,2分鐘)后吸除部分培養(yǎng)液,,懸浮菌體后將其涂布于一個平板中。(涂布剩余的菌液可置于4℃保存,,如果次日的轉化菌落數過少可以將剩下的菌液再涂布新的培養(yǎng)板)
注意事項:
1.進行轉化操作時,,應根據相應溫度及無菌條件的要求進行。
2.感受態(tài)細胞應保存在-70℃,,不可多次凍融和放置時間過長,,以避免感受態(tài)細胞的轉化效率。
3.為防止轉化實驗不成功,,可以保留部分連接反應液,,以重新轉化,將損失降到很低的程度,。