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便攜式熒光定量PCR儀
閱讀：2526 發(fā)布時間：2019-6-20前言
本標(biāo)準(zhǔn)按 GB/T 1.1-2009給出的規(guī)則起草,。本標(biāo)準(zhǔn)由中國獸醫(yī)協(xié)會提出并歸口。本標(biāo)準(zhǔn)起草單位:中國動物疫病預(yù)防控制中心,、中國獸醫(yī)藥品監(jiān)察所,、中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院哈爾濱獸醫(yī)研究所、中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蘭州獸醫(yī)研究所,、北京海關(guān),。
非洲豬瘟病毒實(shí)時熒光PCR檢測方法
1、范圍
本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了非洲豬瘟病毒實(shí)時熒光PCR檢測方法的試劑,、儀器和耗材,、操作步驟、結(jié)果判定,、實(shí)驗(yàn)室生物安全等技術(shù)要求,。
本標(biāo)準(zhǔn)適用于豬脾臟、淋巴結(jié),、血液等組織和血粉中非洲豬瘟病毒核酸的檢測,。
2、規(guī)范性引用文件
下列文件對于本文件的應(yīng)用是*的,。凡是注日期的引用文件,，僅注日期的版本適用于本文件。凡是不注日期的引用文件,，其版本(包括所有的修改單)適用于本文件,。
GB 19489 實(shí)驗(yàn)室 生物安全通用要求
NY/T 541 獸醫(yī)診斷樣品采集、保存與運(yùn)輸技術(shù)規(guī)范
3,、試劑
3.1DNA提取試劑
DNA提取試劑的配制見附錄A,，或選取商品化的病毒DNA提取試劑盒并參照說明書進(jìn)行DNA提取。
3.2 2 × PCR緩沖液
2× PCR緩沖液的配制見附錄A,。
3.3引物探針
3.3.1采用針對非洲豬瘟病毒VP72基因(核苷酸序列見附錄B)的引物及探針:
上游引物ASF-CADC-rPCRF:5'-1528-ATAGAGATACAGCTCTTCCAG-1548-3'
下游引物ASF-CADC-rPCRR:5'-1660-GTATGTAAGAGCTGCAGAAC-1679-3'
熒光探針ASF-CADC-Probe:5'-1638-FAM-TATCGATAAGATTGAT-MGB-1653-3'
3.3.2可以使用世界動物衛(wèi)生組織(OIE)在陸生動物診斷技術(shù)和疫苗手冊(Manual of Diagnostic Tests andVaccines for Terrestrial Animals)第2.8.1章African Swine Fever中提供的引物和探針,，并按照手冊中規(guī)定的檢測程序和判定標(biāo)準(zhǔn)操作:
上游引物ASF-OIE-rPCRF:5'-1627-CTGCTCATGGTATCAATCTTATCGA-1651-3'
下游引物ASF-OIE-rPCRR:
5'-1857-GATACCACAAGATCRGCCGT-1876-3'
熒光探針ASF-OIE-Probe:
5'-1761-FAM-CCACGGGAGGAATACCAACCCAGTG-TAMRA-1785-3'
3.3.3使用國家農(nóng)業(yè)行政主管部門批準(zhǔn)的其他引物,、探針，應(yīng)對檢測程序和判定標(biāo)準(zhǔn)作相應(yīng)調(diào)整,。
3.4 陰性及陽性對照
陰性及陽性對照的制備方法見附錄C,。
3.5 其他試劑
消毒液、5U/μLTaq DNA聚合酶,、無菌無核酸酶水,、0.01mol/L PBS(pH7.2)。
消毒液配制見附錄A,， 0.01mol/L PBS配制見附錄A,。
4、儀器和耗材
分析天平(感量0.1 mg),、高速臺式冷凍離心機(jī)(高離心速度不低于12 000 r/min),、冰盒、實(shí)時熒光PCR儀及配套反應(yīng)管(板),、組織研磨器、-20℃冰箱,、可調(diào)移液器(2 μL,，20 μL，200μL,，1 000 μL),、1.5mL離心管(無核酸酶)。
5,、操作步驟
5.1 樣品采集及運(yùn)輸
樣品采集及運(yùn)輸按照NY/T 541的規(guī)定執(zhí)行,，采集豬的脾臟、淋巴結(jié),、血液等組織材料或血粉用于檢測,，樣品應(yīng)在冷藏條件下盡快運(yùn)輸至實(shí)驗(yàn)室，避免反復(fù)凍融,。采樣時應(yīng)穿戴個人生物安全防護(hù)裝備,，實(shí)施現(xiàn)場消毒和廢棄物處理。
5.2 樣品處理
檢測前樣品應(yīng)在二級生物安全柜中處理,。取0.1g~0.2g組織或血粉,，經(jīng)研磨破碎后加1mL的0.01mol/L PBS(pH7.2)制成勻漿，經(jīng)10 000 r/min離心取上清;全血,、血清樣品直接取1mL,，置于1.5 mL離心管內(nèi)蓋緊管帽。將上述處理的樣品置于60℃條件下滅活30min,。
5.3 樣品保存
采集或處理好的樣品在2℃~8℃條件下保存應(yīng)不超過24 h;如需長期保存,，應(yīng)放置-70℃冰箱，但應(yīng)避免反復(fù)凍融(凍融不超過3次)。
5.4 病毒DNA提取
5.4.1 DNA提取應(yīng)在樣本制備區(qū)內(nèi)采用以下方法進(jìn)行,，若使用其他等效的病毒DNA提取試劑,，則按照試劑說明書操作。
5.4.2 待檢樣品,、陽性對照和陰性對照的份數(shù)總和用n表示,，取n個滅菌1.5 mL離心管，逐管編號,。
5.4.3 每管加入200μL DNA提取液1,，然后分別加入待測樣品、陰性對照和陽性對照各200μL,，1份樣品換用1個吸頭,，混勻器上震蕩混勻5s。于4℃~25℃條件下,，13 000 r/min離心10 min,。DNA提取液1見附錄A。
5.4.4 盡可能吸取上清,、棄去,，吸頭不要碰到沉淀，再加入10 μL DNA提取液2,，混勻器上震蕩混勻5 s,。于4℃~25℃條件下，2 000 r/min離心10s,。DNA提取液2見附錄A,。
5.4.5 100℃干浴或沸水浴10 min。
5.4.6 加入90μL無DNA酶的滅菌去離子水,，13 000 r/min離心10 min,，上清即為提取的DNA，-20℃保存?zhèn)溆?。無DNA酶的滅菌去離子水見附錄A,。
5.5 實(shí)時熒光PCR操作
5.5.1 在反應(yīng)混合物配制區(qū)、樣品制備區(qū)和檢測區(qū)分別進(jìn)行5.5.2~5.5.4,。
5.5.2 每個檢測反應(yīng)體系需使用20μL實(shí)時熒光PCR反應(yīng)液,。根據(jù)5.4.2中設(shè)定的n值，按附錄D配制反應(yīng)液,，充分混勻后分裝,，每個PCR反應(yīng)管20μL。轉(zhuǎn)移PCR反應(yīng)管至樣品制備區(qū),。
5.5.3 在上述5.5.2的反應(yīng)管中分別加入5.4中提取的DNA溶液5μL,，使每管總體積達(dá)到25 μL,，記錄反應(yīng)管對應(yīng)的樣品編號。蓋緊管蓋后,，瞬時離心,。
5.5.4 將5.5.3加樣后的反應(yīng)管放入實(shí)時熒光PCR檢測儀內(nèi)，記錄反應(yīng)管擺放順序,。選定5-羧基熒光素(FAM)作為報告基團(tuán),，小溝結(jié)合物(MGB)為淬滅基團(tuán)，反應(yīng)參數(shù)設(shè)置如下:預(yù)變性95℃/3 min;95℃/15 s,，52℃/10 s,，60℃/35 s，45個循環(huán);在每次循環(huán)的60℃退火延伸時收集熒光,。試驗(yàn)結(jié)束后,，根據(jù)收集的Ct值和熒光曲線判定結(jié)果。
6,、結(jié)果判定
6.1 結(jié)果分析條件設(shè)定
實(shí)時熒光PCR檢測閾值設(shè)定原則:閾值線超過陰性對照擴(kuò)增曲線的高點(diǎn),，且相交于陽性對照擴(kuò)增曲線進(jìn)入指數(shù)增長期的拐點(diǎn)，或根據(jù)儀器噪聲情況進(jìn)行調(diào)整,。每個樣品反應(yīng)管內(nèi)的熒光信號到達(dá)設(shè)定的域值時所經(jīng)歷的循環(huán)數(shù)即為Ct值,。
6.2 結(jié)果描述及判定
當(dāng)陽性對照Ct值≤28.0且出現(xiàn)典型擴(kuò)增曲線，陰性對照無Ct值無擴(kuò)增曲線時,，實(shí)驗(yàn)成立，實(shí)例參考附錄E,。當(dāng)被檢樣品出現(xiàn)典型的擴(kuò)增曲線且Ct值≤38.0時,，判為非洲豬瘟病毒核酸陽性;被檢樣品無Ct值，判為非洲豬瘟病毒核酸陰性;對于Ct值＞38.0的樣品且出現(xiàn)典型的擴(kuò)增曲線,，應(yīng)重檢,，重檢仍出現(xiàn)上述結(jié)果的判為陽性，否則判為陰性,。