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   原代細胞分離的方法有多種,，常用的是機械解離細胞法,、酶學解離細胞法以及螯合劑解離細胞法，下面介紹酶解聚方法獲得純化的原代細胞,。

1,、胰蛋白酶 純化法

●在去除不需要的組織后，使用無菌的解剖刀和剪子把剩余的組織切成3~4 mm小片,，通過懸浮在無鈣鎂的平衡鹽溶液中清洗組織碎片,。讓組織碎片沉淀，去除上清液。重復清洗2到3次,。

●將盛有組織碎片的容器置于冰上,，去除殘留的上清液。加入0.25%溶解在無鈣鎂的平衡鹽溶液中的胰蛋白酶（100 mg組織加入1ml 胰蛋白酶）,。

●在4℃孵育6到18小時,，使幾乎沒有胰蛋白酶活性的酶盡可能滲透進去。

●移棄組織碎片中的胰蛋白酶,，在37℃孵育包含殘留胰蛋白酶的組織碎片20到30分鐘,。

●在組織碎片加入熱的*培養(yǎng)基，用移液管輕輕地分散組織,。如果使用無血清培養(yǎng)基,，要加入大豆胰蛋白酶抑制劑。

●通過無菌不銹鋼絲網(wǎng)（100～200 mm）過濾,，分散所有剩余組織,。計數(shù)和接種細胞，進行培養(yǎng),。

2,、膠原酶純化法

●用無菌解剖刀和剪子把剩余組織切成3~4 mm小片，用Hanks'平衡液（HBSS）清洗組織碎片幾次,。

●加入膠原酶（50～200單位/ml,，溶解在HBSS中）。

●在37℃孵育4到18小時,。加入3mM CaCl2增加解離效率,。

●通過無菌不銹鋼絲網(wǎng)或尼龍網(wǎng)過濾細胞懸液，以分離分散細胞,、組織碎片和較大的碎片,。如果需要進一步的解聚，在碎片中加入新鮮的膠原酶,。

●通過離心在HBSS中清洗懸液幾次,。

●再一次在培養(yǎng)基中懸浮細胞，計數(shù)和接種細胞,，進行培養(yǎng),。

3、Dispase純化法

●用無菌解剖刀和剪子把剩余組織切成3~4 mm小片,，用不含鈣鎂的平衡鹽溶液清洗組織碎片幾次,。

●加入Dispase（0.6～2.4單位/ml 溶解在無鈣鎂的平衡鹽溶液）

●在37℃孵育20分鐘到幾個小時。

●通過無菌不銹鋼絲網(wǎng)或尼龍網(wǎng)過濾細胞懸液,，以分離分散細胞,、組織碎片和較大的碎片,。如果需要進一步的解聚，在碎片中加入新鮮的Dispase,。

●通過離心在平衡鹽溶液中清洗懸液幾次,。

●再一次在培養(yǎng)基中懸浮細胞，計數(shù)和接種細胞,，進行培養(yǎng),。

分離細胞后，首ci傳代需要注意的問題：

●傳代培養(yǎng)時先觀察細胞的活性,。

●細胞的活率應該超過90%,，密度控制在80%左右

●對于無血清培養(yǎng)基，需要降低胰蛋白酶使用量,。

（1） 移棄使用過的細胞培養(yǎng)基,。

（2）使用不包含有鈣鎂的平衡鹽溶液或EDTA清洗細胞。在培養(yǎng)瓶背著細胞的一面加入清洗溶液,，通過轉(zhuǎn)動培養(yǎng)瓶1到2分鐘清洗細胞層,，然后去除清洗液,。

（3）加入胰酶消化,，消化細胞與細胞，操作手法,，試劑的效價有密切的關系,，消化時應注意觀察細胞形態(tài)，如細胞變得橢圓透亮,，并且可以觀察到細胞與細胞間的間隙時,，輕拍瓶身可以看見成流沙狀，即可中止消化,，消化時盡量減少對細胞的吹打,。

（4）當細胞*分離時，垂直放置培養(yǎng)瓶,，讓細胞流到培養(yǎng)瓶的底部,。在培養(yǎng)瓶中加入*培養(yǎng)基中止消化，計數(shù)并再次培養(yǎng)細胞,。

（5）對于無血清培養(yǎng)基,，加入大豆胰蛋白酶抑制劑。通常使用1∶1（v∶v）0.25 mg/ml胰蛋白酶抑制劑到胰蛋白酶中將抑制胰蛋白酶活性,。