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流感病毒N6亞型核酸檢測試劑盒（熒光PCR法）反應(yīng)流程常規(guī)程序:

將PCR反應(yīng)所需的成分配置完后,，在PCR儀上于94-96℃預(yù)加熱幾十秒至幾分鐘，使模板DNA充分變性,，然后進(jìn)入擴(kuò)增循環(huán),。在每一個循環(huán)中，先于94℃保持30秒鐘使模板變性,，然后將溫度降到復(fù)性溫度（一般50-60℃之間）,，一般保持30秒鐘，使引物與模板充分退火,；在72℃保持1分鐘（擴(kuò)增1kb片段）,，使引物在模板上延伸，合成DNA,，完成一個循環(huán),。重復(fù)這樣的循環(huán)25～35次，使擴(kuò)增的DNA片段大量累積,。最后,，在72℃保持3-7min，使產(chǎn)物延伸完整,，4℃保存。

2．復(fù)性（退火）和延伸溫度

復(fù)性的溫度是PCR擴(kuò)增是否順利的關(guān)鍵因素,，通常在50-60℃之間,。具體的溫度主要由引物的Tm值決定。延伸溫度絕大多數(shù)設(shè)定為72℃,。如果復(fù)性的溫度很高,，可以將延伸溫度和復(fù)性溫度設(shè)置成同一溫度，變成二步法PCR,。

3．反應(yīng)時間

變性步驟一般使用30秒鐘,，如果模板的G+C含量較高，或直接用細(xì)胞做模板,，變性時間可適當(dāng)延長,。復(fù)性時間有30秒種一般是足夠的。延伸時間由擴(kuò)增產(chǎn)物的大小決定,，一般采用1kb用1分鐘來保證充足的時間,。

4．循環(huán)次數(shù)

循環(huán)次數(shù)主要與模板的起始數(shù)量有關(guān)，在模板拷貝數(shù)為104～105數(shù)量級時,，循環(huán)數(shù)通常為25～35次,。

平臺效應(yīng)（plateaueffect）：PCR擴(kuò)增過程后期會出現(xiàn)的產(chǎn)物的積累按減弱的指數(shù)速率增長的現(xiàn)象。原因：底物和引物的濃度已經(jīng)降低,，dNTP和DNA聚合酶的穩(wěn)定性或活性降低,，產(chǎn)生的焦磷酸會出現(xiàn)末端產(chǎn)物抑制作用,，非特異性產(chǎn)物或引物的二聚體出現(xiàn)非特異性競爭作用，擴(kuò)增產(chǎn)物自身復(fù)性,，高濃度擴(kuò)增產(chǎn)物變性不ce底,。

5．PCR反應(yīng)液的配制

PCR反應(yīng)體系的配置方式有時也會影響反應(yīng)的正常進(jìn)行。常規(guī)方法與其它酶學(xué)反應(yīng)一樣,，在最后加入DNA聚合酶,。早期的PCR儀沒有帶加熱的蓋子，要求在反應(yīng)液上覆蓋一層礦物油,，防止水分蒸發(fā),。

對于使用具3’-5’外切活性的高溫DNA聚合酶時，有時會擴(kuò)增不出產(chǎn)物,。在遇到這個問題時,，如果將反應(yīng)成分分開配制，A管含模板,、引物和dNTP,，以及調(diào)整體積的H2O，B管含緩沖液,、DNA聚合酶和水,，然后再將兩管溶液混合起來，可較好地克服這個問題,。

按照常規(guī)的方法配制反應(yīng)體系,，有時會出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增的問題。熱啟動（hotstart）PCR操作方式可較好解決這一問題,。將dNTP,、緩沖液，Mg2+和primer先配制好,，然后加入一粒蠟珠（如AmpliWaxPCRQam100）,，加熱熔化，再冷卻,，使蠟將溶液封住,，最后加入模板和DNA聚合酶等剩余成分。只有當(dāng)PCR反應(yīng)進(jìn)入高溫階段后,，蠟層熔化,，所有反應(yīng)成分才會混合在一起。