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小鼠肝細胞原代培養(yǎng)實驗

閱讀:311          發(fā)布時間:2019-2-14
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 實驗方法原理

將小鼠的肝細胞從機體中取出,,經(jīng)胰酶,、螯合劑(常用EDTA)處理,分散成單細胞,,置合適的培養(yǎng)基中培養(yǎng),,使細胞得以生存、生長和繁殖,。 

實驗材料小鼠

試劑,、試劑盒DMEM無血清DMEM培養(yǎng)基胰酶PBS

儀器、耗材飯盒紗布剪子鑷子燒杯平皿研磨玻片濾網(wǎng)離心管6孔培養(yǎng)板吸管移液管手套微量加樣器

實驗步驟

1. 將小鼠斷頸致死,,置75%酒精泡2-3秒鐘,,取肝臟,置于盛有PBS的平皿中,。

 

2. 剔除脂肪,、結(jié)締組織、血液等雜物,,轉(zhuǎn)移到另一個盛有PBS液的平皿中,。

 

3. 用手術(shù)剪將臟器剪成小塊(大小約1mm2),玻片研磨,,轉(zhuǎn)到離心管,,離心(1 000 rpm,,5 min)。

 

4. 視組織或細胞量加入5-6倍(3-5 ml)胰酶,,37℃中消化20分鐘,,每隔5分鐘振蕩一次,或用吸管吹打一次,,使細胞分離,。

 

5. 加入3-5 ml含血清的培養(yǎng)液以中止胰酶消化作用。

 

6. 用100目孔徑濾網(wǎng)濾過,,除去未消化的大組織塊,。

 

7. 再次離心5 min,棄上清液,。

 

8. 加入無血清培養(yǎng)液5 ml,,沖散細胞,再離心一次,,棄上清液,。

 

9. 加入含血清的培養(yǎng)液1-2 ml(視細胞量),血球計數(shù)板計數(shù),。

 

10.  將細胞調(diào)整到5×105/ml左右,,轉(zhuǎn)移至6孔培養(yǎng)板中,37℃下培養(yǎng),。

收起 

注意事項

1. 自取材開始,,保持所有組織細胞處于無菌條件,。細胞計數(shù)可在有菌環(huán)境中進行,。

 

2. 在超凈臺中,組織細胞,、培養(yǎng)液等不能暴露過久,,以免溶液蒸發(fā)。

 

3. 凡在超凈臺外操作的步驟,,各器皿需用蓋子或橡皮塞蓋住,,以防止細菌落入。

 

4. 操作前要洗手,,進入超凈工作臺后要用75%酒精或0.2%新潔爾滅擦拭手,。試劑瓶口也要擦拭。

 

5. 點燃酒精燈,,操作在火焰附近進行,,耐熱物品要經(jīng)常在火焰上燒灼。金屬器械燒灼時間不能太長,,以免退火,,且冷卻后才能夾取組織。吸取過營養(yǎng)液的用具不能再燒灼,以免燒焦形成碳膜,。

 

6. 操作動作要準確敏捷,,但又不能太快,以防空氣流動,,增加污染機會,。

 

7. 不能用手觸及消毒器皿的工作部分,工作臺面上的用品擺放要布局合理,。

 

8. 瓶子開口后要盡量保持45°斜位,。

 

9. 吸溶液的吸管等不能混用。

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