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傳代細胞培養(yǎng)實驗

閱讀:508          發(fā)布時間:2018-12-19
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傳代細胞培養(yǎng)實驗

實驗方法原理    
當原代培養(yǎng)成功以后,隨著培養(yǎng)時間的延長和細胞不斷分裂,,一方面細胞之間相互接觸而發(fā)生接觸性抑制,生長速度減慢甚至停止;另一方面培養(yǎng)基內(nèi)的營養(yǎng)物不足和代謝物積累不利于細胞生長甚至發(fā)生中毒,,如果不及時的減少細胞密度,細胞將逐漸衰老死亡,。因此需要將培養(yǎng)物按照比例重新接種到新的培養(yǎng)器皿(瓶)內(nèi)進行培養(yǎng),。這個過程就稱為傳代培養(yǎng)。貼壁培養(yǎng)細胞的傳代通常是采用胰蛋白酶消化把細胞分散成單細胞再傳代,,而懸浮型生長細胞的傳代則用直接傳代法或離心法傳代,。細胞種類不同,所需的培養(yǎng)基,、添加劑以及傳代培養(yǎng)的操作都會有所不同,,
實驗材料    細胞
試劑、試劑盒    Hanks胰蛋白酶EDTA培養(yǎng)液
儀器,、耗材    吸管培養(yǎng)瓶
實驗步驟    
一,、貼壁細胞:HeLa細胞的傳代培養(yǎng)

1. 選取生長密度80%左右的HeLa細胞,在生物安全柜中操作,,吸去培養(yǎng)皿中的舊培養(yǎng)基,,加入2 mL的D-Hanks溶液,漂洗細胞以除去殘留的血清,。

2. 吸去培養(yǎng)皿中的D-Hanks溶液,,加入2 mL 0.25%胰蛋白酶消化液,于37℃消化2~3 min(如消化程度不夠,,可延長時間),,倒置顯微鏡下觀察細胞,當大部分細胞變圓時,,輕輕吸去酶消化液(如果有較多細胞漂起,,需要直接加入*培養(yǎng)基來終止胰蛋白酶的消化反應(yīng))。

3. 加入4 mL*培養(yǎng)基,,用移液管反復吹打細胞成為細胞懸液,。將細胞懸液轉(zhuǎn)移到15 mL離心管中,1000 rpm離心5 min,。

4. 輕輕吸去上清后用*培養(yǎng)基重懸細胞,,把細胞懸液一分為二或者一分為三后分別轉(zhuǎn)移到新的培養(yǎng)皿中,。

5. 接種好的細胞,應(yīng)在培養(yǎng)皿上標記上細胞名稱,、本次傳代日期和操作人,,輕輕搖勻后轉(zhuǎn)移到CO2培養(yǎng)箱中于37℃培養(yǎng)。

6. 細胞培養(yǎng)24 h后,,根據(jù)培養(yǎng)基的顏色及細胞的生長密度進行相應(yīng)的操作(更換新鮮培養(yǎng)基或者再次傳代處理),。

二、懸浮細胞或半貼壁細胞的傳代培養(yǎng)
  
懸浮細胞不貼壁(半貼壁細胞貼壁不緊),,所以不需要借助胰蛋白酶消化,,具體過程如下:

1. 取狀態(tài)良好的細胞,在生物安全柜中操作,,用移液管把細胞吹打均勻,。

2. 把細胞懸液轉(zhuǎn)移到15 mL離心管中,1000 rpm離心5 min,。

3. 輕輕吸去上清后用*培養(yǎng)基重懸細胞,,把細胞懸液一分為二或者一分為三后分別轉(zhuǎn)移到新的培養(yǎng)皿中。

4. 接種好的細胞,,應(yīng)在培養(yǎng)皿上標記上細胞名稱,、本次傳代日期和操作人.輕輕搖勻后轉(zhuǎn)移到CO2培養(yǎng)箱中于37℃培養(yǎng)。

5. 細胞培養(yǎng)24 h后,,根據(jù)培養(yǎng)基的顏色及細胞的生長密度進行相應(yīng)的操作(更換新鮮培養(yǎng)基或者再次傳代處理),。

收起 
注意事項    
1.  把握發(fā)了傳代時機,已如前述,,在80%~90%匯合階段,,過早傳代細胞產(chǎn)量少,過晚細胞健康狀態(tài)不佳,。

2.  消化時間要適度,,過短細胞不易從瓶壁脫落,過長細胞可脫落流失,。

3.  消化液濃度要適宜,,過濃時消化作用強烈,細胞反應(yīng)快,,所需消化時間短,,掌握不好,細胞易流失,。

4.  各種細胞對消化反應(yīng)不同,,有的敏感,,有的遲鈍,,因此應(yīng)根據(jù)所用細胞特點制定適宜消化措施,。有的細胞附著瓶壁不牢,用吸管可從瓶壁直接吹下來,,但這樣容易傷害細胞,,細胞大片脫落掉,不易計數(shù),,應(yīng)盡可能采用消化法分散細胞為妥,。

5.  消化傳代良好時,細胞受損害少,,細胞懸液均勻,,各分裝樣品中數(shù)量誤差小,細胞生長增殖速度一致,,實驗結(jié)果可靠性大,。

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